Імунологічні особливості кріоаблації під час комплексного лікування онкологічних захворювань

Автор(и)

  • Anatoliy M. Goltsev Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків, Україна
  • Mykola O. Bondarovych Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків, Україна
  • Tatiana G. Dubrava Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків, Україна
  • Natalya M. Babenko Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків, Україна
  • Yuliya O. Gaevska Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків, Україна
  • Maksim V. Ostankov Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків, Україна
  • Iryna A. Buriak Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків, Україна

DOI:

https://doi.org/10.15407/cryo29.04.297

Ключові слова:

кріоаблація, ракові стовбурові клітини, імунна система, антиген, дендритні клітини

Анотація

ÐšÑ€Ñ–Ð¾Ð°Ð±Ð»Ð°Ñ†Ñ–Ñ Ñ” методом вибору при лікуванні Ñолідних пухлин різної локалізації. Крім деÑтрукції патологічної тканини, ÐºÑ€Ñ–Ð¾Ð°Ð±Ð»Ð°Ñ†Ñ–Ñ Ð²Ð¸ÐºÐ»Ð¸ÐºÐ°Ñ” комплекÑні зміни в імунній ÑиÑтемі. У роботі коротко розглÑдаютьÑÑ Ð¿Ð¸Ñ‚Ð°Ð½Ð½Ñ Ñ€ÐµÐ°Ð»Ñ–Ð·Ð°Ñ†Ñ–Ñ— абÑкопального ефекту в ході кріохірургії пухлин та можливі зміни в імунній ÑиÑтемі, Ñкі його Ñупровождують. ÐбÑкопальний ефект здійÑнюєтьÑÑ Ð·Ð° рахунок Ð²Ð¸Ð²Ñ–Ð»ÑŒÐ½ÐµÐ½Ð½Ñ Ð°Ð½Ñ‚Ð¸Ð³ÐµÐ½Ñ–Ð² із зруйнованих клітин, Ñкі запуÑкають каÑкад імунних реакцій. У цій Ñтатті узагальнено результати поєднаного заÑтоÑÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ ÐºÑ€Ñ–Ð°Ð±Ð»Ð°Ñ†Ñ–Ñ— та імунотерапевтичних методів, зокрема адоптивної терапії. Ð’Ð²ÐµÐ´ÐµÐ½Ð½Ñ Ð´ÐµÐ½Ð´Ñ€Ð¸Ñ‚Ð½Ð¸Ñ… клітин у поєднанні з проведеннÑм кріоаблації дозволÑÑ” Ñ–Ñтотно поÑилити протипухлинний імунітет та знизити ризик Ð²Ð¸Ð½Ð¸ÐºÐ½ÐµÐ½Ð½Ñ Ñ€ÐµÑ†Ð¸Ð´Ð¸Ð²Ñƒ.

 

Probl Cryobiol Cryomed 2019; 29(4): XXX–XXX

Біографії авторів

Anatoliy M. Goltsev, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків, Україна

Відділ кріопатофізіології та імунології

Mykola O. Bondarovych, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків, Україна

Відділ кріопатофізіології та імунології

Tatiana G. Dubrava, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків, Україна

Відділ кріопатофізіології та імунології

Natalya M. Babenko, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків, Україна

Відділ кріопатофізіології та імунології

Yuliya O. Gaevska, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків, Україна

Відділ кріопатофізіології та імунології

Maksim V. Ostankov, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків, Україна

Відділ кріопатофізіології та імунології

Iryna A. Buriak, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків, Україна

Відділ кріомікробіології

Посилання

Ahmedov SM, Rahimi FK, Ahmedov SSh, et al. [Application of cryogenic temperatures in liver surgery]. Reports of the Academician of Sciences of the Republic of Tajikistan. 2016, 59 (11-12): 524-33. Russian.

Benzon B, Glavaris SA, Simons BW, et al. Combining immune check-point blockade and cryoablation in an immunocompetent hormone sensitive murine model of prostate cancer. Prostate Cancer Prostatic Dis. 2018; 21(1): 126−36. CrossRef

Bayjoo P, Rees RC, Goepel JR, Jacob G. Natural killer cell activity following cryosurgery of normal and tumour bearing liver in an animal model. J Clin Lab Immunol. 1991; 35(3): 129-32. PubMed

Buriak I, Fleck R, Fuller B, Stacey G. The cryoprotectant DMSO. Identifying problems and developing its safe and effective use. In: Abstracts of the 55th SLTB Scientific Conference, Oct. 2-4, 2019, Seville, Spain. Seville; 2019. p. 46.

Campbell DE, Tustin NB, Riedel E, et al. Cryopreservation decreases receptor PD-1 and ligand PD-L1 coinhibitory expression on peripheral blood mononuclear cell-derived T cells and monocytes. Clin Vaccine Immunol. 2009; 16(11): 1648-53. CrossRef

Cha JH, Yang WH, Xia W, et al. Metformin promotes antitumor immunity via endoplasmic-reticulum-associated degradation of PD-L1. Mol Cell. 2018; 71(4): 606-20. CrossRef

El-Ashmawy NE, El-Zamarany EA, Salem ML, et al. A new strategy for enhancing antitumor immune response using dendritic cells loaded with chemo-resistant cancer stem-like cells in experimental mice model. Mol Immunol. 2019;111: 106-17. CrossRef

Gallucci S, Chakhtoura M, Lee MH, Qiu CC. The metabolic modulator metformin affects the activation and survival of murine dendritic cell subsets. J Immunol [Internet] . 2019 [Cited 18.01.2019]; 202(1 Suppl): 180.17 Available from: https://www.jimmunol.org/content/202/1_Supplement/180.17

Goltsev A, Bondarovich N, Babenko N, Gaevskaya Yu. Freezing conditions determine the integrity of antigenic characteristics of cancer cells. Experimental Oncology. 2018; 40 (2): 159.

Goltsev AN, Bondarovich NA, Babenko NN, et al. Freezing conditions determine functional potential of tumor cells. Cryobiology. 2018; 85: 168. CrossRef

Goltsev AM, Bondarovych MO, Babenko NM, et al. Effect of different cryopreservation regimens on Ehrlich carcinoma growth. Cell Tissue Bank. 2019; 20(3): 411-21. CrossRef

Goltsev AN, Safranchuk OV, Bondarovich NA, et al. [Change in cryolability of cancer stem cells during in vivo culture of Ehrlich adenocarcinoma]. Fiziol Zh. 2011; 57(4): 68-76. Ukranian. CrossRef

Gulley JL, Madan RA, Pachynski R et al. Role of antigen spread and distinctive characteristics of immunotherapy in cancer treatment. J Natl Cancer Inst [Internet]. 2017 [cited 19.11.2019]; 109(4): djw261. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC5441294/pdf/djw261.pdf CrossRef

Hamad GG, Neifeld JP. Biochemical, hematologic, and immunologic alterations following hepatic cryotherapy. Semin Surg Oncol. 1998; 14(2): 122-8. CrossRef

Li X, Zhong Z, Liang S, et al. Effect of cryopreservation on IL-4, IFNgamma and IL-6 production of porcine peripheral blood lymphocytes. Cryobiology. 2009; 59(3):322-6. CrossRef

Lleo A, Rimassa L, Colombo M. Hepatotoxicity of immune check point inhibitors: Approach and management. Dig Liver Dis. 2019; 51(8):1074-8. CrossRef

Mahmoodi S, Nezafat N, Negahdaripour M, Ghasemi Y. A new approach for cancer immunotherapy based on the cancer stem cell antigens properties. Curr Mol Med. 2019; 19(1): 2-11. CrossRef

Paczulla AM, Rothfelder K, Raffel S, et al Absence of NKG2D ligands defines leukaemia stem cells and mediates their immune evasion. Nature. 2019; 572(7768): 254-9. CrossRef

Robilotto AT, Baust JM, Van Buskirk RG, et al. Temperature-dependent activation of differential apoptotic pathways during cryoablation in a human prostate cancer model. Prostate Cancer Prostatic Dis. 2013; 16(1): 41-9. CrossRef

Sabel MS. Cryo-immunology: a review of the literature and proposed mechanisms for stimulatory versus suppressive immune responses. Cryobiology. 2009; 58(1): 1-11. CrossRef

Si TG, Wang JP, Guo Z. Analysis of circulating regulatory T cells (CD4+CD25+CD127-) after cryosurgery in prostate cancer. Asian J Androl. 2013;15(4):461-5. CrossRef

Sidana A. Cancer immunotherapy using tumor cryoablation. Immunotherapy. 2014; 6(1): 85-93. CrossRef

Soanes WA, Ablin RJ, Gonder MJ. Remission of metastatic lesions following cryosurgery in prostatic cancer: immunologic considerations. J Urol. 1970; 104(1): 154-9. CrossRef

Steinman RM, Cohn ZA. Identification of a novel cell type in peripheral lymphoid organs of mice. I. Morphology, quantitation, tissue distribution. J Exp Med. 1973; 137(5): 1142-62. CrossRef

Tan W, Tang H, Jiang X. et al. Metformin mediates induction of miR-708 to inhibit self-renewal and chemoresistance of breast cancer stem cells through targeting CD47. J Cell Mol Med. 2019; 23(9): 5994-6004. CrossRef

Vermaelen K. Vaccine strategies to improve anti-cancer cellular immune responses. Front Immunol [Internet]. 2019 [cited 19.11.2019]; 10:8. Available from: www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC6349827/pdf/fimmu-10-00008.pdf CrossRef

Vijendren A, Yung M, Sanchez J. Occupational health issues amongst UK doctors: a literature review. Occup Med (Lond). 2015; 65 (7): 519-28. CrossRef

Xu P, Yin K, Tang X, et al. Metformin inhibits the function of granulocytic myeloid-derived suppressor cells in tumor-bearing mice. Biomed Pharmacother [Internet]. 2019 [cited 07.11.2019]; 120: 109458. Available from: https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0753332219336157 CrossRef

Yang X, Guo Y, Guo Z, et al. Cryoablation inhibition of distant untreated tumors (abscopal effect) is immune mediated. Oncotarget. 2018; 10(41): 4180-91. CrossRef

Downloads

Опубліковано

2019-12-17

Як цитувати

Goltsev, A. M., Bondarovych, M. O., Dubrava, T. G., Babenko, N. M., Gaevska, Y. O., Ostankov, M. V., & Buriak, I. A. (2019). Імунологічні особливості кріоаблації під час комплексного лікування онкологічних захворювань. Проблеми кріобіології і кріомедицини, 29(4), 297–302. https://doi.org/10.15407/cryo29.04.297