Методы Ñ…Ñ€Ð°Ð½ÐµÐ½Ð¸Ñ Ñложных Ð ÐК-Ñодержащих вируÑов
DOI:
https://doi.org/10.15407/cryo27.04.287Ключові слова:
Ñкладнозбудовані Ð ÐК-вміÑтні віруÑи, довгоÑтрокове зберіганнÑ, ліофілізаціÑ, Ñтабілізуючі заÑоби, захиÑні Ñередовища, віруÑ, вакцинаАнотація
Ð’ оглÑді розглÑнуто окрему проблему кріобіології – розробку методів довгоÑтрокового Ð·Ð±ÐµÑ€Ñ–Ð³Ð°Ð½Ð½Ñ Ñкладнозбудованих Ð ÐК-міÑтких віруÑів. ÐеобхідніÑÑ‚ÑŒ даної роботи обумовлена значним розповÑюдженнÑм інфекційних захворювань, Ñкі викликані даними віруÑами, та збільшеннÑм кількоÑÑ‚Ñ– доÑліджень, ÑпрÑмованих на розробку препаратів Ð´Ð»Ñ Ñ—Ñ… імунопрофілактики та імунотерапії. Технології виробництва цих препаратів включають етапи довготривалаго Ð·Ð±ÐµÑ€Ñ–Ð³Ð°Ð½Ð½Ñ Ð²Ñ–Ñ€ÑƒÑів. Ð”Ð»Ñ Ñ—Ñ… конÑÐµÑ€Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ Ð²Ð¸ÐºÐ¾Ñ€Ð¸Ñтовують ліофілізацію та Ð·Ð±ÐµÑ€Ñ–Ð³Ð°Ð½Ð½Ñ Ð·Ð° температури нижче 0°С. Ðле на Ñьогодні відÑутні загальноприйнÑÑ‚Ñ– підходи до вибору Ñкладу захиÑних Ñередовищ Ð´Ð»Ñ Ð»Ñ–Ð¾Ñ„Ñ–Ð»Ñ–Ð·Ð°Ñ†Ñ–Ñ— чи низькотемпературного Ð·Ð±ÐµÑ€Ñ–Ð³Ð°Ð½Ð½Ñ Ð²Ñ–Ñ€ÑƒÑів. З цією метою заÑтоÑовують домішки та комбінації різних цукрів, багатоатомних Ñпиртів, білків тваринного походженнÑ, хімічних Ñполук. Ð”Ð»Ñ Ð·Ð±ÐµÑ€Ñ–Ð³Ð°Ð½Ð½Ñ Ð»Ñ–Ð¾Ñ„Ñ–Ð»Ñ–Ð·Ð¾Ð²Ð°Ð½Ð¸Ñ… віруÑів викориÑтовують температури 4 або –20°С, а Ð´Ð»Ñ Ð·Ð±ÐµÑ€ÐµÐ¶ÐµÐ½Ð½Ñ Ð²Ñ–Ñ€ÑƒÑів у замороженому Ñтані – від –60 до –85°С, що обумовлено доÑтупніÑÑ‚ÑŽ морозильних камер, Ñкі забезпечують вказані температурні режими, та виÑокою ÑхоронніÑÑ‚ÑŽ віруÑів різних ÑімейÑтв.
Посилання
ATCC Virology guide. Tips and techniques for propagating virus in tissue culture and embryonated chicken eggs. Manassas: ATCC; 2016.
Bean B., Moore B.M., Sterner B. et al. Survival of influenza viruses on environmental surfaces. Journal of Infectious Diseases 1982; 146(1): 47–51. CrossRef PubMed
Brovarnik V.V., Golovach T.M. Information support of the microorganisms cultures depository. Control Systems and Machines 2015; (4): 58-66.
Burkova V.V., Visekantsev I.P., Lavrik A.A. Preservation of infectious activity of rabies virus industrial strains stored at various temperatures // Electronic periodical publication of SFU 'Live and bioconcent systems'. – 2014; (9). – Available from: http://www.jbks.ru/archive/issue -9/article – 2.
Carpenter J.F., Izutsu K., Randolph T.W. Freezing- and dryinginduced perturbations of protein structure and mechanisms of protein protection by stabilizing additives. In: L. Rey, J.C. May, editors. Freeze Drying/Lyophilisation of Pharmaceutical and Biological Products. 3d ed. London: Informa Healthcare; 2010: 167–197. PubMed
Chaniot S.C.M., Holmes M.J., Stott E.J., Tyrrell D.A.J. An investigation of media for the long term storage of three respiratory viruses. Arch Virol 1974; 44(4): 396–400. CrossRef
Fernie B.F., Gerin J.L. The stabilization and purification of respiratory syncytial virus using MgSO4. Virology 1980; 106(1): 141–144. CrossRef
Gould E.A. Methods for long-term virus preservation. Mol Biotechnol 1999; 13(1): 57–66. CrossRef
Greiff D. Stabilities of suspensions of influenza virus dried by sublimation of ice in vacuo to different contents of residual moisture and sealed under different gases. Appl Microbiol 1970; 20(6): 935–938. PubMed
Greiff D., Rightsel W. A. Stabilities of suspensions of viruses after freezing or drying by vacuum sublimation and storage. Cryobiology 1967; 3(6): 432–444. CrossRef
Gupta C.K., Leszczynski J., Gupta R.K., Siber G.R. Stabilization of respiratory syncytial virus (RSV) against thermal inactivation and freeze-thaw cycles for development and control of RSV vaccines and immune globulin. Vaccine 1996; 18(15): 1417–1420. CrossRef
Howell C.L., Miller M.J. Effect of sucrose phosphate and sorbitol on infectivity of enveloped viruses during storage. J Clin Microbiol 1983; 18(3): 658–662.
Hubalek Z. Protectants used in the cryopreservation of microorganisms. Cryobiology 2003; 46(3): 205–229. CrossRef
Johnson F.B. Transport of viral specimens. Clinical Microbiology Reviews 1990; 3(2): 120–131. CrossRef
Lvov D.K., Alimbarova L.M., Alkhovsky S.V. et al. Medical virology. Moscow: MIA; 2008.
Malenovska H. The influence of stabilizers and rates of freezing on preserving of structurally different animal viruses during lyophilization and subsequent storage. J Appl Microbiol 2014; 117(6): 1810–1819. CrossRef PubMed
McAleer W.J., Markus H.Z., McLean A. A. et al. Stability on storage at various temperatures of live measles, mumps and rubella virus vaccines in new stabilizer. Journal of Biological Standardization 1980: 8(4): 281–287. CrossRef
Meslin F.X., Kaplan M.M., Koprowski H. Laboratory techniques in rabies. Geneva: World Health Organization; 1996.
Pisal S., Wawde G., Salvankar S. et al. Vacuum foam drying for preservation of LaSota virus: effect of additives. AAPS PharmSciTech 2006; 7(3): E30–E37. CrossRef PubMed
Polupan I.M. Estimation of different storage methods of rabies virus vaccine strains. Veterinary Biotechnology 2011; (20): 127–133.
Rabies. In: OIE terrestrial manual. Paris: World Organisation for Animal Health; 2013. p. 1–28.
Sarkar J., Sreenivasa B.P., Singh R.P. et al. Comparative efficacy of various chemical stabilizers on the thermostability of a liveattenuated peste des petits ruminants (PPR) vaccine. Vaccine 2003; 21(32): 4728–4735. CrossRef
Stegniy M.Yu. Properties of cattle viruses, preserved at moderately low temperatures. Probl Cryobiol 2003; (3): 88–91.
Stroganova I.Ya. Infectious activity of cattle respiratory syncytial virus during storage. Bulletin of Krasnoyarsk State Agrarian University 2009; (12): 155–157.
Tanaka T., Takeda T., Miyajama R. Cryoprotective effect of saccharides on denaturation of catalase during freeze-drying. Chem Pharm Bull 1991; 675(5): 1091–1094. CrossRef
Tannock G.A., Hierholzer J.C., Bryce D.A. et al. Freeze-drying of respiratory syncytial viruses for transportation and storage. J Clin Microbiol 1987; 25(9): 1769–1771. PubMed
Tedeschi R., De Paoli P. Collection and preservation of frozen microorganisms. Methods Mol Biol 2011; 675: 313–326. CrossRef
Wallis C., Melnick J.L. Stabilization of enveloped viruses by dimethyl sulfoxide. J Virol 1968; 2(9): 953–954. PubMed
World Health Organization. Recommendations for inactivated rabies vaccine for human use produced in cell substrates and embryonated eggs. In: WHO Expert Committee on Biological Standardization. Fifty-sixth report. Geneva: World Health Organization; 2007. p. 83–132.
Downloads
Опубліковано
Як цитувати
Номер
Розділ
Ліцензія
Автори, які публікуються у цьому журналі, погоджуються з наступними умовами:
- Автори залишають за собою право на авторство своєї роботи та передають журналу право першої публікації цієї роботи на умовах ліцензії Creative Commons Attribution License, котра дозволяє іншим особам вільно розповсюджувати опубліковану роботу з обов'язковим посиланням на авторів оригінальної роботи та першу публікацію роботи у цьому журналі.
- Автори мають право укладати самостійні додаткові угоди щодо неексклюзивного розповсюдження роботи у тому вигляді, в якому вона була опублікована цим журналом (наприклад, розміщувати роботу в електронному сховищі установи або публікувати у складі монографії), за умови збереження посилання на першу публікацію роботи у цьому журналі.
- Політика журналу дозволяє і заохочує розміщення авторами в мережі Інтернет (наприклад, у сховищах установ або на особистих веб-сайтах) рукопису роботи, як до подання цього рукопису до редакції, так і під час його редакційного опрацювання, оскільки це сприяє виникненню продуктивної наукової дискусії та позитивно позначається на оперативності та динаміці цитування опублікованої роботи (див. The Effect of Open Access).
