Кріоконсервування сім’яних канальців щурів із застосуванням біополімерів та повільного неконтрольованого охолодження

Автор(и)

  • Nataliia O. Volkova Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини Національної академії наук України, м. Харків https://orcid.org/0000-0003-1832-6116
  • Mariia S. Yukhta Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини Національної академії наук України, м. Харків http://orcid.org/0000-0001-9124-8455
  • Lyudmyla G. Chernyshenko Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини Національної академії наук України, м. Харків
  • Lyudmyla V. Stepanyuk Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини Національної академії наук України, м. Харків
  • Larisa V. Sokil Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини Національної академії наук України, м. Харків
  • Anatoliy M. Goltsev Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини Національної академії наук України, м. Харків

DOI:

https://doi.org/10.15407/cryo28.04.278

Ключові слова:

сім’яні канальці, статевонезрілі щури, кріопротектори, бичачий сироватковий альбумін, колагеновий гель, фібриновий гель

Анотація

Одним із ÑучаÑних напрÑмків медико-біологічних доÑліджень Ñ” заÑтоÑÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ Ð½Ð¾Ð²Ñ–Ñ‚Ð½Ñ–Ñ… біоматеріалів Ñ– кріо-біологічніх технологій з метою Ð·Ð±ÐµÑ€ÐµÐ¶ÐµÐ½Ð½Ñ Ñ„ÐµÑ€Ñ‚Ð¸Ð»ÑŒÐ½Ð¾ÑÑ‚Ñ–, оÑобливо за необхідноÑÑ‚Ñ– Ð¿Ñ€Ð¾Ð²ÐµÐ´ÐµÐ½Ð½Ñ Ñ†Ð¸Ñ‚Ð¾Ñ‚Ð¾ÐºÑичної терапії. ІÑнуючі протоколи кріоконÑÐµÑ€Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ Ñ‚ÐµÑтикулÑрної тканини потребують подальшої оптимізації та удоÑконаленнÑ. У роботі проведено порівнÑльну оцінку впливу біополімерів (бичачий Ñироватковий альбумін, колагеновий Ñ– фібриновий гелі) в комбінації з 0,6 Ðœ диметилÑульфокÑидом або 0,7 Ðœ гліцерином на морфофункціональні характе-риÑтики Ñім’Ñних канальців Ñтатевонезрілих щурів піÑÐ»Ñ ÐºÑ€Ñ–Ð¾ÐºÐ¾Ð½ÑÐµÑ€Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ Ð· викориÑтаннÑм повільної неконтрольо-ваної швидкоÑті  Ð¾Ñ…Ð¾Ð»Ð¾Ð´Ð¶ÐµÐ½Ð½Ñ Ð´Ð¾ –70°С впродовж 40 хв та наÑтупним зануреннÑм зразків у рідкий азот. Ðа оÑнові результатів аналізу показників життєздатноÑÑ‚Ñ–, загальної активноÑÑ‚Ñ– лактатдегідрогенази, МТТ-теÑту та гіÑтоморфометричних даних (Ñтупінь ретракції клітин, чаÑтота деÑквамації епітелію, кількіÑÑ‚ÑŒ клітин із конденÑованим Ñдром, наÑвніÑÑ‚ÑŒ дефектів Ñперматогенного шару) вÑтановлено, що найбільш оптимальним із уÑÑ–Ñ… доÑліджених комбінацій біополімерів та кріопротекторів було Ð¿Ð¾Ñ”Ð´Ð½Ð°Ð½Ð½Ñ Ñ„Ñ–Ð±Ñ€Ð¸Ð½Ð¾Ð²Ð¾Ð³Ð¾ гелю з 0,7 Ðœ гліцерином. Отримані дані можуть викориÑтовуватиÑÑ Ð´Ð»Ñ Ð¾Ð±Ò‘Ñ€ÑƒÐ½Ñ‚ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ Ñ‚Ð° розробки ефективних методик кріоконÑÐµÑ€Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ Ñім’Ñних канальців людини з викориÑтаннÑм біополімерів.

 

Probl Cryobiol Cryomed 2018; 28(4): XXX–XXX

Біографії авторів

Nataliia O. Volkova, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини Національної академії наук України, м. Харків

Відділ кріопатофізіології та імунології

Mariia S. Yukhta, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини Національної академії наук України, м. Харків

Відділ кріопатофізіології та імунології

Lyudmyla G. Chernyshenko, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини Національної академії наук України, м. Харків

Відділ кріопатофізіології та імунології

Lyudmyla V. Stepanyuk, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини Національної академії наук України, м. Харків

Відділ кріопатофізіології та імунології

Larisa V. Sokil, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини Національної академії наук України, м. Харків

Відділ кріопатофізіології та імунології

Anatoliy M. Goltsev, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини Національної академії наук України, м. Харків

Відділ кріопатофізіології та імунології

Посилання

Allenspach AL, Kraemer TG. Ice crystal patterns in artiï¬cial gels of extracellular matrix molecules after quick-freezing and freeze-substitution. Cryobiology. 1989; 26(2): 170–9.

CrossRef

Belous AM, Gricshenko VI. [Cryobiology]. Kiev: Naukova dumka, 1994. 428 p. Russian.

Bystrova OV, Kalugina AS, Tsybatova EV, et al. [Methods for recovering fertility in cancer patients]. Prakt Onkologiya. 2009; 10(4): 245–53. Russian.

Campion SN, Carvallo FR, Chapin RE, et al. Comparative assessment of the timing of sexual maturation in male Wistar Han and Sprague-Dawley rats. Reprod Toxicol. 2013; 38(7):16–24.

CrossRef

PubMed

Chandrakasan G, Torchia DA, Piez KA. Preparation of intact monomeric collagen from rat tail tendon and skin and the structure of the nonhelical ends in solution. J Biol Chem. 1976;251: 6062–7. PubMed

Chiti MC, Dolmans MM, Donnez J, Amorim CA. Fibrin in reproductive tissue engineering: a review on its application as a biomaterial for fertility preservation. Annals of biomedical engineering. 2017; 45(7): 1650–63.

CrossRef

PubMed

Dimasi L. Meeting increased demands on cell-based processes by using deï¬ned media supplements. BioProcess International. 2011; 9(8): 48–58.

European Convention for the Protection of Vertebrate Animals used for Experimental and Other Scientiï¬c Purposes. European Treaty Series No. 123 Strasbourg, 18.III.1986. Strasbourg: Council of Europe; 1986. 53p. [Cited 01.02.2018] Available from: https://rm.coe.int/CoERMPublicCommonSearchServices/ DisplayDCTMContent?documentId=090000168007a67b.

Easley C, Simerly C, Schatten G. Stem cell therapeutic pos- sibilities: future therapeutic options for male-factor and female-factor infertility? Reprod Biomed Online [Internet]. 2013; 27(1): 75–80. [Cited 01.02.2018] Available from: https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/ S1472648313001296?via%3Dihub. CrossRef

Farrant J. Is there a common mechanism of protection of living cells by polyvinylpyrrolidone and glycerol during freezing? Nature. 1969; 222: 1175–6. CrossRef

Ginsburg ES, Yanushpolsky EH, Jackson KV. In vitro fertilization for cancer patients and survivors. Fertility and Sterility. 2001; 75(4): 705–10.

CrossRef

Grill G, Porcellini A, Lucarelli G. Role of serum on cryopreservation and subsequent viability of mouse bone marrow hemopoetic stem cells. Cryobiology. 1980; 17(5): 516–20.

CrossRef

Jahnukainen K, Ehmcke J, Sоder O, et al. Clinical potential and putative risks of fertility preservation in children utilizing gonadal tissue or germline stem cells. Pediatr Res. 2006; 59: 40R–47R. CrossRef

Kaidasheva IP. [Methods of clinical and experimental research in medicine]. Poltava: Polimet; 2003. 320 p. Ukrainian.

Keros V, Rosenlund B, Hultenby K, et al. Optimizing cryopre- servation of human testicular tissue: comparison of protocols with glycerol, propanediol and dimethylsulphoxide as cryoprotectants. Hum Reprod. 2005; 20(6): 1676–87.

CrossRef

PubMed

Koebe HG, Dunn JC, Toner M, et al. A new approach to the cryopreservation of hepatocytes in a sandwich culture conï¬guration. Cryobiology. 1990; 27(5): 576–84.

CrossRef

Kvist K, Thorup J, Byslov AG, et al. Cryopreservation of intact testicular tissue from boys with cryptorchidism. Hum Reprod. 2006; 21(2): 484–91.

CrossRef

PubMed

Milazzo JP, Travers A, Bironneau A, et al. Rapid screening of cryopreservation protocols for murine prepubertal testicular tissue by histology and PCNA immunostaining. J Androl. 2010; 31(6): 617–30.

CrossRef

PubMed

Miyamoto Y, Enosawa S, Takeuchi T, et al. Cryopreservation in situ of cell monolayers on collagen vitrigel membrane culture substrata: ready-to-use preparation of primary hepatocytes and ES cells. Cell Transplant. 2009; 18(5): 619–26.

CrossRef

PubMed

Mossman T. Rapid colorimetric assay for cellular growth and survival: application to proliferation and cytotoxicity assays. J Immunol Methods. 1983; 65(1-2): 55–63. CrossRef

Poels J, Abou-Ghannam G, Herman S, et al. In search of better spermatogonial preservation by supplementation of cryopreserved human immature testicular tissue xenografts with n-acetylcysteine and testosterone. Front Surg [Internet]. 2014; 1: 47. [Cited 01.02.2018] Available from: https://www. frontiersin.org/articles/10.3389/fsurg.2014.00047/full. CrossRef

Takahashi T, Hirsh A, Erbe E, Williams RJ. Mechanism of cryoprotection by extracellular polymeric solutes. Biophys J. 1988; 54(3): 509–18.

CrossRef

Volkova NA, Pavlovich EV, Gapon AA, Nikolov OT. Effects of millimeter-wave electromagnetic exposure on the morphology and function of human cryopreserved spermatozoa. Bull Exp Biol Med. 2014; 157(5): 574–6.

CrossRef

PubMed

Volkova NO, Yukhta MS, Chernyshenko LG, et al. Exposure of seminiferous tubules of immature rats to cryoprotective media of various compositions. Probl Cryobiol Cryomed. 2017; 27(3): 203–18.

CrossRef

Volkova NÐ, Yukhta MS, Goltsev A. Mesenchymal stem cells in restoration of fertility at experimental pelvic inflammatory disease. Stem cells international [Internet]. 2017; Article ID 2014132. [Cited 01.02.2018] Available from: https://www. hindawi.com/journals/sci/2017/2014132/. CrossRef

Williams RJ. The surface activity of PVP and other polymers and their antihemolytic capacity. Cryobiology. 1983; 20: 521–6.

CrossRef

Wyns C, Curaba M, Vanabelle B, et al. Options for fertility preservation in prepubertal boys. Hum Reprod Update. 2010;16(3): 312–28.

CrossRef

PubMed

Yudintseva N, Pleskach N, Smagina L, et al. Reconstruction of connective tissue from ï¬brin-based dermal equivalent transplanted to animals with experimental wounds. Cell and Tissue Biology. 2010; 4(5): 476–80.

CrossRef

Downloads

Опубліковано

2019-03-01

Як цитувати

Volkova, N. O., Yukhta, M. S., Chernyshenko, L. G., Stepanyuk, L. V., Sokil, L. V., & Goltsev, A. M. (2019). Кріоконсервування сім’яних канальців щурів із застосуванням біополімерів та повільного неконтрольованого охолодження. Проблеми кріобіології і кріомедицини, 28(4), 278–292. https://doi.org/10.15407/cryo28.04.278

Номер

Розділ

Теоретична та експериментальна кріобіологія