Антиоксидантна та антирадикальна дія екстрактів із кріоконсервованої плаценти людини

Автор(и)

  • Stanislav V. Narozhnyi Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини Національної академії наук України, м. Харків https://orcid.org/0000-0001-9690-0203
  • Kateryna D. Rozanova Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини Національної академії наук України, м. Харків
  • Olena M. Bobrova Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини Національної академії наук України, м. Харків
  • Oleg A. Nardid Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини Національної академії наук України, м. Харків

DOI:

https://doi.org/10.15407/cryo28.04.322

Ключові слова:

кріоконсервування, екстракт плаценти людини, антиоксидантна дія, антирадикальна активність, окисний стрес, нітрит натрію

Анотація

У роботі предÑтавлено дані Ð²Ð¸Ð²Ñ‡ÐµÐ½Ð½Ñ Ð²Ð¿Ð»Ð¸Ð²Ñƒ низькотемпературного Ð·Ð±ÐµÑ€Ñ–Ð³Ð°Ð½Ð½Ñ Ð¿Ð»Ð°Ñ†ÐµÐ½Ñ‚Ð¸ людини на антиокÑидантну дію Ñ—Ñ— водно-Ñольових екÑтрактів по відношенню до еритроцитів у Ñтані окиÑного ÑтреÑу, викликаного нітритом натрію. ЗахиÑну дію екÑтрактів визначали у двох ÑеріÑÑ… екÑпериментів: в умовах одночаÑної екÑпозиції еритроцитів із екÑтрактами Ñ– нітритом та екÑпозиції еритроцитів із нітритом натрію, Ñкі були попередньо екÑпоновані з екÑтрактами. Рівень окиÑного ÑтреÑу оцінювали за концентрацією метгемоглобіну у еритроцитах, антирадикальну активніÑÑ‚ÑŒ – за здатніÑÑ‚ÑŽ екÑтрактів відновлювати ABTS+-радикал. Показано, що водно-Ñольові екÑтракти збері-гають захиÑну дію по відношенню до еритроцитів у Ñтані окиÑного ÑтреÑу за умов зберіганні плаценти впродовж 3-Ñ… міÑÑців за (–20°С) Ñ– 6 міÑÑців (–80°С). Ð’Ñтановлено, що екÑтракти, отримані з плаценти, Ñка зберігалаÑÑ Ð²Ð¿Ñ€Ð¾Ð´Ð¾Ð²Ð¶ 6 міÑÑців за температури –20°С втрачають антиокÑидантну дію, при цьому Ñ—Ñ… антирадикальна активніÑÑ‚ÑŒ знижуєтьÑÑ Ð½Ð° 50% по відношенню до Ñвіжотриманих екÑтрактів. Ðайбільш активна Ñ„Ñ€Ð°ÐºÑ†Ñ–Ñ Ð²Ð¾Ð´Ð½Ð¾-Ñольових екÑтрактів з м. м. 10–12 кДа зберігає Ñвою антиокÑидантну дію піÑÐ»Ñ Ð·Ð±ÐµÑ€Ñ–Ð³Ð°Ð½Ð½Ñ Ð¿Ð»Ð°Ñ†ÐµÐ½Ñ‚Ð¸ впродовж 3 (–20°С) Ñ– 6 (–80°С) міÑÑців. ПіÑÐ»Ñ 6 міÑÑців Ð·Ð±ÐµÑ€Ñ–Ð³Ð°Ð½Ð½Ñ Ð¿Ð»Ð°Ñ†ÐµÐ½Ñ‚Ð¸ за (–20ºС) значуще зменшуєтьÑÑ Ð°Ð½Ñ‚Ð¸Ñ€Ð°Ð´Ð¸ÐºÐ°Ð»ÑŒÐ½Ð° активніÑÑ‚ÑŒ цієї фракції.

Біографії авторів

Stanislav V. Narozhnyi, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини Національної академії наук України, м. Харків

Відділ кріобіофізики

Kateryna D. Rozanova, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини Національної академії наук України, м. Харків

Відділ кріобіофізики

Olena M. Bobrova, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини Національної академії наук України, м. Харків

Відділ кріобіофізики

Oleg A. Nardid, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини Національної академії наук України, м. Харків

Відділ кріобіофізики

Посилання

Ansari FA, Ali SN, Arif H, et al. Acute oral dose of sodium nitrite induces redox imbalance, DNA damage, metabolic and histological changes in rat intestine. PLOS ONE [Internet]. 2017; 12(4): 1–22 [Cited 03.03.2018]. Available from: https://journals.plos.org/plosone/article?id=10.1371/journal.pone.0175196 CrossRef PubMed

Ansari FA, Ali SN, Mahmood R. Sodium nitrite-induced oxidative stress causes membrane damage, protein oxidation, lipid peroxidation and alters major metabolic pathways in human erythrocytes. Toxicol In Vitro. 2015; 29(7):1878–86.

CrossRef

PubMed

Bala A, Haldar PK. Regulatory role of peroxinitrite (ONOO-) for oxidative damage to human Red Blood Cells (hRBC). Inflamm Cell Signal [Internet]. 2015; 2(1): 1–4. [Cited 03.03.2018]. Available from: http://www.smartscitech.com/index.php/ICS/article/view/695/pdf_78 CrossRef

Baynes JW, Dominiczak MH. Medical Biochemistry. 4th ed. Philadelphia: Elsevier; 2014. Chapter 37, Oxygen and life; p. 497–506.

Birben E, Sahiner UM, Sackesen C, et al. Oxidative stress and antioxidant defense. World Allergy Organ J [Internet]. 2012;5(1): 9–19. [Cited 03.03.2018]. Available from: https://waojournal.biomedcentral.com/articles/10.1097/WOX.0b013e3182439613 CrossRef PubMed

Cao E, Chen Y, Cui Z, et al. Effect of freezing and thawing rates on denaturation of proteins in aqueous solutions. Biotechnol Bioenerg. 2003; 82(6): 684–90.

CrossRef

PubMed

Choi HY, Kim SW, Kim B, at al. Alpha-fetoprotein, identiï¬ed as a novel marker for the antioxidant effect of placental extract, exhibits synergistic antioxidant activity in the presence of estradiol. PLOS ONE [Internet]. 2014; 9(6): e99421. [Cited 03.03.2018]. Available from: https://journals.plos.org/plosone/article?id=10.1371/journal.pone.0099421 CrossRef PubMed

Çimen MYB. Free radical metabolism in human erythrocytes. Clinica Chimica Acta. 2008; 390: 1–11.

CrossRef

PubMed

Gonţa M. The role of the natural antioxidants in the oxihaemoglobin oxidation and the diminution of nitrite concentration. Chem J of Moldova. 2007; 2(1): 67–77. CrossRef

Harris DA. Spectrophotometric assays in: Spectrophotometry & spectrofluorimetry. Washington: IRL Press; 1987. p. 58.

Henriquez C, Aliaga C, Lissi E. Kinetics proï¬les in the reaction of ABTS derived radicals with simple phenols and polyphenols. J Chil Chem Soc. 2004; 49: 74–6.

CrossRef

Li X, Wang Z, Xiaofei Q, et al. Oxidative stress and antioxidant status in immune thrombocytopenia. J Blood Disord Transfus [Internet]. 2017; 8(4): 1–4. [Cited 03.03.2018]. Available from: https://www.omicsonline.org/open-access/oxidative-stress-and-antioxidant-status-in-immune-thrombocytopenia-2155-9864-1000398.pdf CrossRef

Lucantoni G, Pietraforte D, Matarrese P., et al. The red blood cell as a biosensor for monitoring oxidative imbalance in chronic obstructive pulmonary disease: an ex vivo and in vitro study. Antioxid Redox Signal. 2006; 8(7–8):1171–82. CrossRef PubMed

Lutsenko NS, Prokopyuk OS, Bondarenko IA, at al. Application of cryopreserved placental tissue at isoimmunization of pregnant women. Problems of Cryobiology. 2008; 18(3): 316–8. Full Text

May JM, Qu ZC, Xia L, et al. Nitrite uptake and metabolism and oxidant stress in human erythrocytes. Am J Physiol Cell Physiol. 2000; 279(6): C1946–54. CrossRef PubMed

Myatt L, Cui X. Oxidative stress in the placenta. Histochem Cell Biol 2004; 122(4):369–82.

CrossRef

PubMed

Nardid OA, Rozanova ED, Tsymbal LV, et al. Effect of low-temperature storage of placenta on its extract properties. Problems of Cryobiology. 2008; 18(2): 172. Full Text

Narozhnyi SV, Nardid OA, Rozanova YeD, et al. [Effect of placenta freezing on antioxidant activity of its extracts against erythrocytes in oxidative stress]. Bulletin of Problems in Biology and Medicine. 2017; 4(3): 168–72. Russian. CrossRef

Pogozhikh DN, Rozanova ED, Nardid OA, et al. Comparativeevaluation of properties of human placenta extracts stored at –20°С and extracts obtained from stored at –20°С tissues. Cryo Letters. 2010; 31(2): 172.

Pogozhikh DN, Rozanova ED, Nardid OA. Change of proper- ties of human placenta aqueous-saline extracts during low temperature storage. Problems of Cryobiology. 2008; 18(1): 22–6. Full Text

Poston L, Igosheva N, Mistry HD. et al. Role of oxidative stress and antioxidant supplementation in pregnancy disorders. Am J Clin Nutr. 2011; 94(6): 1980S–1985S. CrossRef PubMed

Pradedova EV, Isheeva OD, Salyaev RK. Classiï¬cation of the antioxidant defense system as the ground for reasonable organization of experimental studies of the oxidative stress in plants. Russ J Plant Physiol. 2011;58(2):210–7.

CrossRef

Prokopyuk VY, Falko OV, Musatova IB. Low temperature preservation and storage of placental biological derivatives. Probl Cryobiol Cryomed. 2015; 25(4): 291–311.

CrossRef

Re R, Pellegrini N, Proteggente A, et al. Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation decolorization assay. Free Radic Biol Med. 1999; 26(9–10): 1231-7. PubMed

Rozanova S, Cherkashina Y, Repina S, et al. Protective effect of placenta extracts against nitrite–induced oxidative stress in human erythrocytes. J Cell Mol Biol Lett. 2012; 17(2): 240-8.

CrossRef PubMed

Rozanova S. Antioxidant properties of extracts derived from placentae of different gestation terms. Oxid Antioxid Med Sci [Internet]. 2014; 3(3): 181-6. [Cited 03.03.2018]. Available from: https://www.ejmanager.com/mnstemps/65/65-1407488704. pdf?t=1537727194. CrossRef

Rozanova SL, Rozanova ED, Nardid OA, et al. Antioxidant activity of placenta extracts after low temperature and hypothermic storage. Problems of Cryobiology. 2011; 21(3): 291–300. Full Text

Sarciaux JM, Mansour S, Hageman MJ, et al. Effect of buffer composition and processing conditions on aggregation of bovine IgG during freeze-drying. J Pharm Sci. 1999; 88(12): 1354–61.

CrossRef

PubMed

Shinde V, Dhalwal K, Paradkar AR, et al. Evaluation of in-vitro antioxidant activity of human placental extract. Pharmacologyonline[Internet].2006;3:172-9.[Cited03.03.2018]. Available from: http://pharmacologyonline.silae.it/ï¬les/archives/ 2006/vol3/014.Shinde.pdf

Togashi S, Takahashi N, Kubo Y. Puriï¬cation and identiï¬cation of antioxidant substances in human-placenta extracts. J Health Sci. 2000; 46(2): 117–25.

CrossRef

Umekawa T, Sugiyama T, Kihira T, et al. Overexpression of thioredoxin-1 reduces oxidative stress in the placenta of transgenic Mice and promotes fetal growth via glucose Metabolism. Endocrinology. 2008;149(8):3980–8.

CrossRef

PubMed

Whiteley GS, Fuller BJ, Hobbs KE. Deterioration of cold-stored tissue specimens due to lipid peroxidation: modulation by antioxidants at high subzero temperatures. Cryobiology. 1992; 29(6): 668–73.

CrossRef PubMed

Zwart A, Buursma A, van Kampen EJ, et al. A multi-wavelength spectrophotometric method for the simultaneous determination of ï¬ve haemoglobin derivatives. J Clin Chem Clin Biochem. 1981; 19: 457–63.

CrossRef PubMed

Downloads

Опубліковано

2019-03-01

Як цитувати

Narozhnyi, S. V., Rozanova, K. D., Bobrova, O. M., & Nardid, O. A. (2019). Антиоксидантна та антирадикальна дія екстрактів із кріоконсервованої плаценти людини. Проблеми кріобіології і кріомедицини, 28(4), 322–332. https://doi.org/10.15407/cryo28.04.322

Номер

Розділ

Теоретична та експериментальна кріобіологія