Інфекційна активність ліофілізованого в різних захисних середовищах вакцинного штаму вірусу сказу L. Pasteur після його подальшого зберігання за різних температур

Автор(и)

  • Viktoriia V. Varianytsia 1Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомеди-цини НАН України, м. Харків 2ПАТ «Фармстандарт-Біолек», м. Харків
  • Igor P. Vysekantsev Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомеди-цини НАН України, м. Харків

DOI:

https://doi.org/10.15407/cryo28.04.333

Ключові слова:

вірус сказу, ліофілізація, культура клітин, захисні середовища, довгострокове зберігання, збереженість вірусу, інфекційна активність вірусу

Анотація

У роботі доÑліджували збереженіÑÑ‚ÑŒ виробничого вакцинного штаму віруÑу Ñказу L. Pasteur піÑÐ»Ñ Ð»Ñ–Ð¾Ñ„Ñ–Ð»Ñ–Ð·Ð°Ñ†Ñ–Ñ— в різних захиÑних Ñередовищах та наÑтупного Ð·Ð±ÐµÑ€Ñ–Ð³Ð°Ð½Ð½Ñ Ð·Ð° температур 5, –20 и –80ºС. ПіÑÐ»Ñ Ð·Ð±ÐµÑ€Ñ–Ð³Ð°Ð½Ð½Ñ Ð¿Ñ€Ð¾Ñ‚Ñгом 24 міÑÑців (термін ÑпоÑтереженнÑ) найбільш виÑокі показники інфекційної активноÑÑ‚Ñ– віруÑу в уÑÑ–Ñ… Ñередовищах були відзначені за температури –80ºС. МакÑимальну збереженіÑÑ‚ÑŒ віруÑу забезпечувало захиÑне Ñередовище на оÑнові поживного Ñередовища DMEM із додаваннÑм 0,5% бичачого Ñироваткового альбуміну, 1% желатину та 5% Ñахарози. Інфекційна активніÑÑ‚ÑŒ зразків, ліофілізованих у Ñередовищах, Ñкі міÑÑ‚ÑÑ‚ÑŒ 5% Ñахарози або 3% желатину Ñ– 5% Ñахарози, або 10% Ñахарози, була значуще нижче. Ð’Ñтановлено, що Ð´Ð¾Ð´Ð°Ð²Ð°Ð½Ð½Ñ 3% желатину в захиÑне Ñередовище значно збільшує Ñ‡Ð°Ñ Ñ€Ð¾Ð·Ñ‡Ð¸Ð½ÐµÐ½Ð½Ñ Ð¿Ñ€ÐµÐ¿Ð°Ñ€Ð°Ñ‚Ñ–Ð² у порівнÑнні з іншими Ñередовищами Ñ– нормою регламенту (не більше хвилини), що уÑкладнює Ñ—Ñ… практичне викориÑтаннÑ. Ð§Ð°Ñ Ñ€Ð¾Ð·Ñ‡Ð¸Ð½ÐµÐ½Ð½Ñ Ð·Ñ€Ð°Ð·ÐºÑ–Ð² з 1% желатину Ñ– 5% Ñахарози або 10% Ñахарози був значуще більше, ніж препаратів з 5% Ñахарози, але відповідав виробничому регламенту.

 

Probl Cryobiol Cryomed 2018; 28(4): XXX–XXX

Біографії авторів

Viktoriia V. Varianytsia, 1Інститут проблем кріобіології і кріомеди-цини НАН України, м. Харків 2ПАТ «Фармстандарт-Біолек», м. Харків

1 Відділ кріомікробіології

Igor P. Vysekantsev, Інститут проблем кріобіології і кріомеди-цини НАН України, м. Харків

Відділ кріомікробіології

Посилання

ATCC. Virology guide. Tips and techniques for propagating virus in tissue culture and embryonated chicken eggs. [Internet]. Manassas: ATCC; 2016. 32 p. [Cited 25.09.18] Available from: https://www.atcc.org/~/media/PDFs/Culture%20Guides/Virology_Guide.ashx.

Burkova VV, Vysekantsev IP, Lavrik AA. [Preservation of infectious activity of rabies virus industrial strains stored at various temperatures]. Zhivye I Biokosnye Sist. [Internet]. 2014;(9):1–11. [Cited 19.09.18] Available from: http://www.jbks.ru/archive/issue-9/article-23. Russian.

Gould EA. Methods for long-term virus preservation. Molecular Biotechnology. 1999; 13(1):57–66.

CrossRef

Gruzdev LK, Ulasov VI, Gruzdev KN. [Estimation of the effectiveness of stabilizing media in the manufacture of a standard sample of the CVS strain of a ï¬xed rabies virus]. Vetpatologiya. 2007; (4):32–7. Russian.

Johnson FB. Transport of viral specimens. Clinical Microbiology Reviews. 1990; 3(2):120–31.

CrossRef

PubMed

Lalošević D, Lalošević V, Lazarević-Ivanc LJ, Knežević I. BHK-21 cell culture rabies vaccine: immunogenicity of a candidate vaccine for humans. Dev Biol. 2008; 131:421–9. PubMed

Lalosević D, Stankov S, Lazarević-Ivanc L, Lalosević V, Knezević I. Immunogenicity of BHK-rabies vaccine in human volunteers. Medicinski Pregled. 1998; 51:17–9. PubMed

Lvov DK, editor. [Medical virology]. Moscow: MIA; 2008. 656 p. Russian.

Malenovská H. The influence of stabilizers and rates of freezing рите лишние on preserving of structurally different animal viruses during Ñкобки. lyophilization and subsequent storage. Journal of Applied Microbiology. 2014; 117(6):1810–9. CrossRef PubMed

McAleer WJ, Markus HZ, McLean AA, et al. Stability on storage at various temperatures of live measles, mumps and rubella virus vaccines in new stabilizer. Journal of Biological Standardization. 1980; 8(4):281–7.

CrossRef PubMed

Meslin FX, Kaplan MM, Koprowski H, editors. Laboratory techniques in rabies. 4th ed.. Geneva: WHO; 1996. 446 p.

Phillips GO, Harrop R, Wedlock DJ, et al. [A study of water binding in lyophilired viral vaccine systems]. Cryobiology. 1981;18(4):414–9.

CrossRef

Polupan IM. [Estimation of different storage methods of rabies virus vaccine strains]. Veterinarna BIotehnologIya. 2011; (20): 127–33. Ukrainian.

OIE. Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals. [Internet]. Paris: World Organisation for Animal Health; 2018. Chapter 2.1.17, Rabies; p. 1–28. [Cited 25.09.18] Available from: http://www.oie.int/en/international-standard-setting/terrestrial-manual/access-online/

Rokickij PF. [Biological statistics]. Minsk: Vyisshaya shkola; 1973. 320 p. Russian.

Starodubova ES, Preobrazhenskaya OV, Kuzmenko YuV. [Vaccines against rabies: current status and development prospects]. Molekulyarnaya Biologiya. 2015; 49(4):577-84. Russian. CrossRef

Tanaka T, Takeda T, Miyajama R. Cryoprotective effect of saccharides on denaturation of catalase during freeze-drying. Chem Pharm Bull. 1991; 675(5):1091–4.

CrossRef

Varianytsia VV, Vysekantsev IP. Storage methods of complex RNA viruses. Probl Cryobiol Cryomed. 2017; 27(4): 287–95.

CrossRef

WHO Expert Committee on Biological Standardization. Recommendations for inactivated rabies vaccine for human use produced in cell substrates and embryonated eggs. In: WHO Technical Report Series – 941. Fifty-sixth report. Geneva: WHO; 2007. p. 83–132.

Downloads

Опубліковано

2019-03-01

Як цитувати

Varianytsia, V. V., & Vysekantsev, I. P. (2019). Інфекційна активність ліофілізованого в різних захисних середовищах вакцинного штаму вірусу сказу L. Pasteur після його подальшого зберігання за різних температур. Проблеми кріобіології і кріомедицини, 28(4), 333–342. https://doi.org/10.15407/cryo28.04.333

Номер

Розділ

Кріоконсервування біологічних систем