Вплив ліофілізації на Ð·Ð±ÐµÑ€ÐµÐ¶ÐµÐ½Ð½Ñ Ñтруктурно-функціональних характериÑтик лейкоконцентрату кордової крові людини
DOI:
https://doi.org/10.15407/cryo29.04.332Ключові слова:
ліофілізаціÑ, лейкоконцентрат кордової крові людини, колонієутворюючі одиниці, гемопоетичні Ñтовбурові клітини, Т-регулÑторні клітиниАнотація
ДоÑліджували вплив умов ліофілізації на Ñтруктурно-функціональні характериÑтики лейкоконцентрата кордової крові людини (ЛККЧ): кількіÑÑ‚ÑŒ Ñ– життєздатніÑÑ‚ÑŒ, цитоморфологічні показники, вміÑÑ‚ гемопоетичних Ñтовбурових (CD34+) Ñ– Т-регулÑторних клітин (CD4+CD25hÑ–gh), кровотворних колонієутворюючих одиниць у культурі (КОУк). Ð”Ð»Ñ Ð»Ñ–Ð¾Ñ„Ñ–Ð»Ñ–Ð·Ð°Ñ†Ñ–Ñ— клітин ЛККЧ викориÑтовували чотири режими, що включають дві програми із заÑтоÑуваннÑм 3,5% ДМСО й без нього. Програми відрізнÑлиÑÑ Ð·Ð½Ð°Ñ‡ÐµÐ½Ð½Ñм температури й триваліÑÑ‚ÑŽ, при Ñких проводили первинне виÑушуваннÑ. При викориÑтанні першої програми клітини виÑушували протÑгом 10 год (–28ºС, другої програми – 9 год (–18ºС). Розроблений метод ліофілізації ЛККЧ, що припуÑкав викориÑÑ‚Ð°Ð½Ð½Ñ Ð¿ÐµÑ€ÑˆÐ¾Ñ— програми без ДМСО, забезпечив ÑхоронніÑÑ‚ÑŒ клітин у гетерогенній популÑції кордової крові по вÑÑ–Ñ… доÑліджуваних характериÑтиках.
Â
Probl Cryobiol Cryomed 2019; 29(4): XXX–XXX
Посилання
Akel S, Regan D, Wall D, et al. Current thawing and infusion practice of cryopreserved cord blood: the impact on graft quality, recipient safety, and transplantation outcomes. Transfusion. 2014; 54(11): 2997-3009. CrossRef
Ananyina AYe, Tsutsayeva AA, Balyberdina LM, et al. Lyophilisation of Streptomyces aureofaciens endospore culture. Problems of Cryobiology. 2008; 18(4): 404-6.
Castellano JM, Mosher KI, Abbey RJ, et al. Human umbilical cord plasma proteins revitalize hippocampal function in aged mice. Nature. 2017; 544 (7651): 488-92. CrossRef
Dufresne J, Hoang T, Ajambo J, et al. Freeze-dried plasma proteins are stable at room temperature for at least 1 year. Clin Proteomics [Internet]. 2017 [cited 27.10.2017]; 14: 35. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC5659006/ CrossRef
Frimel G., editor. [Immunological methods]. Moskow: Meditsina; 1987. 472 p. Russian.
Goltsev AM, Sokol LV, Stetsyshyn VG, Mosiychuk VV, Bondarovich MO, Grisha IG, Ostankov MV, Lutsenko OD, Ostankova LV, Chernyshenko LH inventors; Institute for Problems of Cryobiology and Cryomedicine, assignee. [Method of lyophilization of leukoconcentrate of cord blood]. Ukraine patent N 125846, 2018 May 25. Ukranian.
Goltsev AM, Taranik GC, Grisha IG, Sokil LV, Bondarovich MO, Ostankov MV, Lutsenko OD, Goltsev KA, Ostankova LV, inventors; Institute for Problems of Cryobiology and Cryomedicine, assignee. [Method of lyophilization of leukoconcentrate of cord blood]. Ukrainian patent 113006, 2017 Jan 10. Ukranian.
Goltsev AN, Volina VV, Ostankov MV, et al. Effect of cryopreservation on functional properties of human cord blood leukoconcentrate nucleated cells. Problems of Cryobiology. 2010; 20(1): 66-72.
Ikeda K, Ohto H, Okuyama Y, et al. Adverse events associated with infusion of hematopoietic stem cell products: a prospective and multicenter surveillance study. Transfus Med Rev. 2018. 32(3): 186-94. CrossRef
International standards for cord blood collection, banking, and release for administration. 6th ed. Omaha (NE): NetCord-FACT; 2016.
Knapp HF, Hammond CA, Hui T, et al Single-cell analysis identifies a CD33+ subset of human cord blood cells with high regenerative potential. Nat Cell Biol. 2018; 20(6): 710-20. CrossRef
Lebedinets VV, Ostankova LV, Dubrava TG, et al. [Use of cryopreserved cord blood to correct immune system in a model of ischemic stroke]. Medytsyna Sogodni i Zavtra. 2015; (4): 2-9. Russian.
Lecchi L, Giovanelli S, Gagliardi B, et al. An update on methods for cryopreservation and thawing of hemopoietic stem cells. Transfus Apher Sci. 2016; 54 (3): 324-36. CrossRef
Li J, Hua TC, Gu XL, Ding Y, et al. Morphology study of lyophilisation mononuclear cells of human cord blood. CryoLetters. 2005; 26(3): 193-200. PubMed
Lo Presti V, Nierkens S, Boelens JJ, van Til NP. Use of cord blood derived T-cells in cancer immunotherapy: milestones achieved and future perspectives. Expert Rev Hematol. 2018; 11(3): 209-18. CrossRef
Makashova OE, Babijchuk LO, Zubova OL, Zubov PM. Optimization of cryopreservation technique for human cord blood nucleated cells using combination of cryoprotectant DMSO and antioxidant N-acetyl-L-cysteine. Probl Cryobiol Cryomed. 2016; 26(4): 295-307. CrossRef
Maral S, Albayrak M, Pala C, et al. Dimethyl sulfoxide-induced tonic-clonic seizure and cardiac arrest during infusion of autologous peripheral blood stem cells. Cell Tissue Bank. 2018; 19(4): 831-2. CrossRef
Menshikov VV, editor. [Laboratory methods for research in clinics]. Moscow: Meditsina, 1987. p. 123-5. Russian.
Merkulov GA. [The course of histological-pathological technics]. Leningrad: Medgiz; 1961. 343 p. Russian.
Natan D, Nagler A, Arav A. Freeze-drying of mononuclear cells derived from umbilical cord blood followed by colony formation. Plos One [Internet]. 2009 [cited 21.04.209]; 4 (4): e5240. Available from: https://journals.plos.org/plosone/article?id=10.1371/journal.pone.0005240 CrossRef
Pushkar NS, Belous ÀÌ, Tsvetkov TsD [Theory and practice of cryogenic and sublimation preservation]. Kyiv: Naukova Dumka; 1984. 259 p. Russian.
Shereshkov S.I. [Culturing of hemopoietic cells on semisolid nutrient media]. Laboratornoe Delo. 1974; (3): 146-50. Russian.
Takanashi M, Selogie E, Reems JA, et al. Current practices for viability testing of cryopreserved cord blood products: an international survey by the cellular therapy team of the Biomedical Excellence for Safer Transfusion (BEST) Collaborative. Transfusion. 2018; 58(9): 2184-91. CrossRef
Tarannik AK, Ostankova LV, Grisha IG, et al. Frozen-dried human cord blood leukoconcentrate as correcting agent of immune status when treating atopic dermatitis (experimental study). Probl Cryobiol Cryomed. 2016; 26(2): 165. CrossRef
Varlamova TI, Kukunina TV, Zhmykhov AA. [Study of the influence of primary crystallization on formation of lyophilized product macrostructure during freezing of drug solutions]. Vestnik Sovremennykh Issledovaniy. 2017; 12(9): 6-11. Russian.
Wakayama S, Ito D, Kamada Y, et al. Tolerance of the freeze-dried mouse sperm nucleus to temperatures ranging from -196°C to 150°C. Sci Rep [Internet]. 2019 [cited 09.11.2019]; 9(1):5719. Available from: https://www.nature.com/articles/s41598-019-42062-8.pdf CrossRef
Xiao HH, Hua TC, Li J, et al. Freeze-drying of mononuclear cells and whole blood of human cord blood. CryoLetters. 2004; 25(2): 111-20. PubMed
ZacarÃas MF, Binetti A, Bockelmann W, et al. Safety, functional properties and technological performance in whey-based media of probiotic candidates from human breast milk. Int Microbiol. 2019; 22(2): 265-77. CrossRef
Downloads
Опубліковано
Як цитувати
Номер
Розділ
Ліцензія
Автори, які публікуються у цьому журналі, погоджуються з наступними умовами:
- Автори залишають за собою право на авторство своєї роботи та передають журналу право першої публікації цієї роботи на умовах ліцензії Creative Commons Attribution License, котра дозволяє іншим особам вільно розповсюджувати опубліковану роботу з обов'язковим посиланням на авторів оригінальної роботи та першу публікацію роботи у цьому журналі.
- Автори мають право укладати самостійні додаткові угоди щодо неексклюзивного розповсюдження роботи у тому вигляді, в якому вона була опублікована цим журналом (наприклад, розміщувати роботу в електронному сховищі установи або публікувати у складі монографії), за умови збереження посилання на першу публікацію роботи у цьому журналі.
- Політика журналу дозволяє і заохочує розміщення авторами в мережі Інтернет (наприклад, у сховищах установ або на особистих веб-сайтах) рукопису роботи, як до подання цього рукопису до редакції, так і під час його редакційного опрацювання, оскільки це сприяє виникненню продуктивної наукової дискусії та позитивно позначається на оперативності та динаміці цитування опублікованої роботи (див. The Effect of Open Access).
