Кріоконсервування мультиклітинних сфероїдів, отриманих із первинної культури клітин спінальних гангліїв новонароджених поросят

Автор(и)

  • Sabina G. Ali Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків
  • Galina A. Bozhok Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків

DOI:

https://doi.org/10.15407/cryo29.04.354

Ключові слова:

спінальні ганглії, мультиклітинні сфероїди, мантійні гліоцити, фібробластоподібні клітини, нейроноподібні клітини, неонатальні поросята

Анотація

Спінальні ганглії (СГ) Ñ” потенційним джерелом нейральних Ñтовбурових клітин, оÑкільки міÑÑ‚ÑÑ‚ÑŒ клітини похідні нервового гребенÑ, Ñкі здатні диференціюватиÑÑ Ð² нейрони Ñ– різні ÑубпопулÑції гліальних клітин. Відомо, що при певних умовах ÐºÑƒÐ»ÑŒÑ‚Ð¸Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ ÐºÐ»Ñ–Ñ‚Ð¸Ð½Ð¸ СГ, отримані від неонатальних пороÑÑÑ‚, утворюють флотуючі мультиклітинні Ñфероїди (МС), здатні до виÑÐµÐ»ÐµÐ½Ð½Ñ Ñ„Ñ–Ð±Ñ€Ð¾Ð±Ð»Ð°Ñтоподібних (ФбК), гліальних (ГлК) i нейроноподібних (ÐпК) клітин. У даній роботі проведено  кріоконÑÐµÑ€Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ ÐœÐ¡, Ñкі були отримані в умовах безÑироваткового культивуваннÑ, з викориÑтаннÑм диметилÑульфокÑиду (ДМСО) в концентраціÑÑ… 5; 7,5; 10% Ñ– двоетапного режиму заморожуваннÑ. Ð’Ñтановлено, що піÑÐ»Ñ ÐºÑ€Ñ–Ð¾ÐºÐ¾Ð½ÑÐµÑ€Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ ÐœÐ¡ зберігають здатніÑÑ‚ÑŒ до адгезії, а також виÑÐµÐ»ÐµÐ½Ð½Ñ iз них трьох типів клітин – ГлК, ÐпК Ñ– ФбК. Однак Ð¿Ñ€Ð¾Ñ†ÐµÑ Ð²Ð¸ÑÐµÐ»ÐµÐ½Ð½Ñ ÐºÐ»Ñ–Ñ‚Ð¸Ð½ iз МС піÑÐ»Ñ ÐºÑ€Ñ–Ð¾ÐºÐ¾Ð½ÑÐµÑ€Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ ÑповільнюєтьÑÑ. ÐšÐ¾Ð½Ñ†ÐµÐ½Ñ‚Ñ€Ð°Ñ†Ñ–Ñ ÐºÑ€Ñ–Ð¾Ð¿Ñ€Ð¾Ñ‚ÐµÐºÑ‚Ð¾Ñ€Ñƒ впливає на тип клітин, що ÑпоÑтерігаєтьÑÑ Ð¿ÐµÑ€ÐµÐ²Ð°Ð¶-но в культурі, отриманій з розморожених МС. ПіÑÐ»Ñ ÐºÑ€Ñ–Ð¾ÐºÐ¾Ð½ÑÐµÑ€Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ Ñƒ приÑутноÑÑ‚Ñ– 10% ДМСО моношар здебільшого ÑкладаєтьÑÑ Ð· ФбК, у той Ñ‡Ð°Ñ Ñк при концентраціÑÑ… 5 Ñ– 7,5% – з ГлК.

 

Probl Cryobiol Cryomed 2019; 29(4): XXX–XXX

Біографії авторів

Sabina G. Ali, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріоендокринології

Galina A. Bozhok, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріоендокринології

Посилання

Ali SG, Sidorenko OS, Bozhok GA. [Influence of nutrient medium composition on the morphological characteristics of culture of dorsal root ganglion cells of neonatal piglets]. The Journal of V. N. Karazin Kharkiv National University. Series «Biology». 2018; 30: 49-59. Russian. CrossRef

Arkhipova SS, Raginov IS, Mukhitov AR, et al. Satellite cells of sensory neurons after various types of sciatic nerve trauma in the rat. Neurosci Behav Physiol. 2010; 40(6):609-14. CrossRef

Barras FM, Kuntzer T, Zurn AD, et al. Local delivery of glial cell line-derived neurotrophic factor improves facial nerve regeneration after late repair. Laryngoscope. 2009; 119(5): 846-55. CrossRef

Bondarenko TP, Legach ЕI, Kiroshka VV, et al. [Cultivation, cryopreservation and transplantation of the tissue of the endocrine glands]. In: Goltsev AN, editor. [Actual problems of cryobiology and cryomedicine.] Kharkiv: IPCC; 2012. p. 361-401. Russian.

Bozenovskiy VA, Baryshnikov AYu. [Human cell adhesion molecules]. Uspekhi sovremennoi biologii. 1994; 114(6): 741-53. Russian.

de Luca AC, Faroni A, Reid AJ. Dorsal root ganglia neurons and differentiated adipose-derived stem cells: An in vitro co-culture model to study peripheral nerve regeneration. J Vis Exp. [Internet]. 2015 [cited 2019 May 02]; (96):e52543. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4354675/ CrossRef

Kang H, Tian L, Thompson W. Terminal Schwann cells guide the reinnervation of muscle after nerve injury. J Neurocytol. 2003; 32(5): 975-85. CrossRef

Koike T, Wakabayashi T, Mori T, et al. Sox2 promotes survival of satellite glial cells in vitro. Biochem Biophys Res Commun. 2015; 464(1): 269-74. CrossRef

Kuznetsov SL, Mushkambarov NN. [Histology, cytology and embryology: Textbook for medical schools]. Moscow:MIA, 2007. 600 p. Russian.

Li H, Dai Y, Shu J, et al. Spheroid cultures promote the stemness of corneal stromal cells. Tissue Cell. 2015; 47(1): 39-48. CrossRef

Liu H, Zhao L, Gu W, et al. Activation of satellite glial cells in trigeminal ganglion following dental injury and inflammation. J Mol Histol. 2018; 49(3): 257-63. CrossRef

Nagoshi N, Shibata S, Kubota Y, et al. Ontogeny and multipotency of neural crest-derived stem cells in mouse bone marrow, dorsal root ganglia, and whisker pad. Cell Stem Cell. 2008; 2(4):392-403. CrossRef

Nascimento RS, Santiago MF, Marques SA, et al. Diversity among satellite glial cells in dorsal root ganglia of the rat. Braz J Med Biol Res. 2008; 41(11): 1011-7. CrossRef

Plaksina EM, Sidorenko OS, Bozhok GA. Cryopreservation of multicellular spheroids derived from newborn piglet adrenal glands. Probl Cryobiol Cryomed. 2017; 27(4): 322-33. CrossRef

Plaksina EM Sidorenko OS, Legach ЕI, et al. [Expression of beta-III-tubulin in the neonatal adrenal cell culture: comparison of monolayer and 3D-culture]. The Journal of V. N. Karazin Kharkiv National University. Series «Biology». 2018; 28: 76-86. Russian. CrossRef

Rosich K, Hanna BF, Ibrahim RK, et al. The effects of glial cell line-derived neurotrophic factor after spinal cord injury. J Neurotrauma. 2017; 34(24): 3311-25. CrossRef

Wang XB, Ma W, Luo T, et al. A novel primary culture method for high-purity satellite glial cells derived from rat dorsal root ganglion. Neural Regen Res. 2019; 13(2): 339-45. CrossRef

Zhou XF, Deng YS, Chie E, et al. Satellite-cell-derived nerve growth factor and neurotrophin-3 are involved in noradrenergic sprouting in the dorsal root ganglia following peripheral nerve injury in the rat. Eur J Neurosci. 1999; 11(5): 1711-22. CrossRef

Downloads

Опубліковано

2019-12-17

Як цитувати

Ali, S. G., & Bozhok, G. A. (2019). Кріоконсервування мультиклітинних сфероїдів, отриманих із первинної культури клітин спінальних гангліїв новонароджених поросят. Проблеми кріобіології і кріомедицини, 29(4), 354–364. https://doi.org/10.15407/cryo29.04.354

Номер

Розділ

Кріоконсервування біологічних систем