До питання про механізм осмотичної стійкості еритроцитів ссавців

Автор(и)

  • Natalia Shpakova Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків
  • Natalia Orlova Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

DOI:

https://doi.org/10.15407/cryo30.04.331

Ключові слова:

еритроцити ссавців, гіпертонічний шок, гіпотонічний стрес, кореляційний аналіз, коефіцієнт рангової кореляції Спірмена

Анотація

Реферат: У роботі досліджено особливості дії гіпертонічного шоку та гіпотонічного стресу на еритроцити різних видів ссавців (людина, бик, кінь, кролик, собака, щур). На підставі результатів кореляційного аналізу (із використанням коефіцієнта рангової кореляції Спірмена) оцінено звʼязок між показниками осмотичної чутливості еритроцитів ссавців і загальновідомими структурно-функціональними характеристиками цих клітин. У роботі представлені та проаналізовані статистично значущі звʼязки. Встановлено, що в умовах гіпотонічного стресу еритроцитів ссавців значення порогових концентрації NaCl і величини осмотичної крихкості корелюють із розмірами клітин (діаметр). За умов гіпертонічного шоку еритроцитів ссавців значення порогових концентрацій NaCl і величини гемолізу клітин у середовищі, що містить 4,0 моль/л NaCl, корелюють із проникністю мембрани для води. Еритроцити ссавців із високим значенням коефіцієнта дифузійного водного транспорту через білкові канали більш стійкі до дії гіпертонічного шоку.

 

Probl Cryobiol Cryomed 2020; 30(4): 331–342

Біографії авторів

Natalia Shpakova, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріоцитології

Natalia Orlova, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріоцитології

Посилання

Abramowicz JS, Miller MW, Battaglia LF, Mazza S. Comparative hemolytic effectiveness of 1 MHz ultrasound on human and rabbit blood in vitro. Ultrasound Med Biol. 2003; 29(6): 867-73. CrossRef

Benga G. Comparative studies of water permeability of red blood cells from humans and over 30 animal species: an overview of 20 years of collaboration with Philip Kuchel. Eur Biophys J. 2013; 42(1): 33-46. CrossRef

Benga G, Borza T. Diffusional water permeability of mammalian red blood cells. Comp Biochem Physiol B. 1995; 112(4): 653-9. CrossRef

Benga G, Chapman BE, Matei H et al. Comparative NMR studies of diffusional water permeability of red blood cells from different species: XVI Dingo (Canis familiaris dingo) and dog (Canis familiaris). Cell Biol Int. 2010; 34(4): 373-8. CrossRef

Benga Gh, Matei H, Frentescu L et al. Comparative nuclear magnetic resonance studies of diffusional water permeability of red blood cells from different species. XI. Horses introduced to Australia and European horses (Equus caballus). Comp Hematol Int. 2000; 10(3): 138-43. CrossRef

Betticher DC, Geiser J. Resistance of mammalian red blood cells of different size to hypertonic milieu. Comp Biochem Physiol A. 1989; 93(2): 429-32. CrossRef

Bogner P, Sipos K, Ludany A et al. Steady-state volumes and metabolism-independent osmotic adaptation in mammalian erythrocytes. Eur Biophys J. 2002; 31(2): 145-52. CrossRef

Curl CL, Bellair CJ, Harris PJ et al. Single cell volume measurement by quantitative phase microscopy (QPM): a case study of erythrocyte morphology. Cell Physiol Biochem. 2006; 17(5-6): 193-200. CrossRef

Florin-Christensen J, Suarez CE, Florin-Christensen M. et al. A unique phospholipid organization in bovine erythrocyte membranes. Proc Natl Acad Sci USA. 2001; 98(14): 7736-41. CrossRef

Fuller BJ, Lane N, Benson EE, editors. Life in the frozen state. Boca Raton, London, New York, Washington, D.C.: CRC Press; 2004. 672 p. CrossRef

Godfrin Y, Horand F, Franco R et al. International seminar on the red blood cells as vehicles for drugs. Expert Opin Biol Ther. 2012; 12(1): 127-33. CrossRef

Gordienko EA, Gordienko YE, Gordienko OI. The physico-mathematical theory of human erythrocyte hypotonic hemolysis phenomenon. Cryo Letters. 2003; 24(4): 229-44.

Gordienko EA, Pushkar NS. [Physical backgrounds for low temperature cell suspension preservation]. Kiev: Naukova dumka; 1994.143 p. Russian.

Komarova NK, Sviridova TG, Stepovik LV, Khairullina AB. [Physical and chemical properties of red blood cells of human and animals in normal and with some endogenous and exogenous effects on the body]. Orenburg: Publishing House of Orenburg State Agrarian University; 2003. 20 p. Russian.

Liu L, Lei T, Bankir L et al. Erythrocyte permeability to urea and water: comparative study in rodents, ruminants, carnivores, humans, and birds. J Comp Physiol B. 2011; 181(1): 65-72. CrossRef

López de Frutos L, Cebolla JJ, Irún P et al. The erythrocyte osmotic resistance test as screening tool for cholesterol-related lysosomal storage diseases. Clin Chim Acta. 2018; 480 (May): 161-5. CrossRef

Matei H, Frentescu L, Benga Gh. Comparative studies of the protein composition of red blood cell membranes from eight mammalian species. J Cell Mol Med. 2000; 4(4): 270-6. CrossRef

Mineo H. Effects of carboxylic acids on osmotic resistance in rat and guinea pig red blood cells in vitro: the relationship between partition coefficient and changes in osmotic fragility. Biochem Pharmacol (Los Angel). [Internet]. 2018; 7(245): 1-9 [cited 2019 Oct 16]. Avaiblable from: https://www.longdom.org/open-access/effects-of-carboxylic-acids-on-osmotic-resistance-in-rat-and-guinea-pig-redblood-cells-in-vitro-the-relationship-between-partition-2167-0501-1000245.pdf

Mineo H, Matsuda C, Suzuki Y, et al. Benzoic acid and its derivatives increase membrane resistance to osmotic pressure in isolated sheep erythrocytes. Biochem Pharmacol (Los Angel). [Internet]. 2018; 7(260): 1-9 [cited 2019 Oct 16]. Avaiblable from: https://www.longdom.org/open-access/benzoic-acid-and-its-derivatives-increase-membrane-resistance-to-osmotic-pressure-in-isolated-sheep-erythrocytes-2167-0501-1000260.pdf

Mineo H, Moriyoshi M. Carboxylic acids with certain molecular structures decrease osmotic fragility against osmotic pressure in cattle erythrocytes in vitro: appearance of a wedge-like effect similar to RBCs in other animal species. Biochem Pharmacol (Los Angel). [Internet]. 2019; 8(264): 1-12 [cited 2019 Oct 16]. Avaiblable from: https://mitsubishi-motors.com.ua/ua/model/eclipse-cross/?utm_source=UMH_Mens_Package&utm_medium=CatFish_100x150&utm_campaign=MMC_Eclipse_Cross_May-18

Nie Z, Cui F, Tzeng YK et al. High-speed mass analysis of whole erythrocytes by charge-detection quadrupole ion trap mass spectrometry. Anal Chem. 2007; 79(19): 7401-7. CrossRef

Orbach A, Zelig O, Yedgar S, Barshtein G. Biophysical and Biochemical Markers of Red Blood Cell Fragility. Transfus Med Hemother. 2017: 44(3):183-7. CrossRef

Pajic-Lijakovic I. Erythrocytes under osmotic stress - modeling considerations. Prog Biophys Mol Biol. 2015; 117(1): 113-24. CrossRef

Petrenko YuM, Vladimirov YuA. [Change in erythrocyte size when swelling in hypoosmotic media]. Biofizika. 1987; 32(3). 448-53. Russian.

Saari JT, Beck JS. Hypotonic hemolysis of human red blood cells: a two-phase process. J Membr Biol. 1975; 23(3−4): 213−26. CrossRef

Shpakova NM. Temperature and osmotic sensitivity of red blood cells of different mammalian species. Animal Biology. 2010; 12(1): 382-91.

Sidorenko EV. [Methods of mathematical processing in psychology]. St. Petersburg: Rech; 2003. 350 p. Russian.

Solomon AK, Chasan B, Dix JA et al.The aqueous pore in the red cell membrane: band 3 as a channel for anions, cations, non-electrolytes, and water. Ann NY Acad Sci. 1983; 414(1): 97-124. CrossRef

Sugie J, Intaglietta M, Sung LA. Water transport and homeostasis as a major function of erythrocytes. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2018; 314(5): H1098-H1107. CrossRef

Tsai S-T, Zhang R, Verkman AS High Channel-mediated water permeability in rabbit erythrocytes: characterization in native cells and expression in Xenopus oocytes. Biochemistry. 1991; 30(8): 2087-92. CrossRef

Yawata Y. Cell membrane: the red blood cell as a model. Weinheim: WILEY−VCH; 2003. 448 р. CrossRef

Yew NS, Dufour E, Przybylska M et al. Erythrocytes encapsulated with phenylalanine hydroxylase exhibit improved pharmacokinetics and lowered plasma phenylalanine levels in normal mice. Mol Genet Metab. 2013; 109(4): 339-44. CrossRef

Zeidel ML, Ambudkar SV, Smith BL, Agre P. Reconstitution of functional water channels in liposomes containing purified red cell CHIP28 protein. Biochemistry. 1992; 31(33): 7436-40. CrossRef

Downloads

Опубліковано

2020-12-14

Як цитувати

Shpakova, N., & Orlova, N. (2020). До питання про механізм осмотичної стійкості еритроцитів ссавців. Проблеми кріобіології і кріомедицини, 30(4), 331–342. https://doi.org/10.15407/cryo30.04.331

Номер

Розділ

Теоретична та експериментальна кріобіологія