Кріоконсервування незрілих ооцитів на стадії Germinal vesicle. Коли доцільніше проводити дозрівання гамет?
DOI:
https://doi.org/10.15407/cryo31.02.161Ключові слова:
ооцити, germinal vesicle, дозрівання in vitro, кріоконсервування, вітрифікаціяАнотація
Збереження фертильності є одним із пріоритетних завдань репродуктивної медицини. Однак у онкохворих пацієнтів, жінок із різними функціональними розладами яєчників можуть існувати протипоказання або не бути можливості кріоконсервування зрілих ооцитів/оваріальної тканини для збереження репродуктивного потенціалу. Тому розробка методів кріоконсервування незрілих ооцитів вважається альтернативною стратегією. У роботі оцінювали виживаність, частоту дозрівання, запліднення і розвитку ембріонів після кріоконсервування незрілих (стадія Germinal vesicle (GV) – група 1) та попередньо дозрілих in vitro (IVM) (група 2) ооцитів порівняно зі зрілими in vivo ооцитами на стадії метафази ІІ (МІІ) (група 3). Показник виживаності становив 97,6, 96,2 та 98,2 % для груп 1–3 відповідно. Частота дозрівання до стадії МІІ ооцитів групи 1 була значуще меншою порівняно з групою 2 і становила 52,0 та 73,2 % відповідно. Найбільша частота запліднення була зафіксована в групі 3, а найнижча – у групі 1. Таку саму тенденцію спостерігали щодо подальшого розвитку ембріонів для груп 1–3: частота бластуляції становила 20,0, 38,5 та 56,9 % відповідно. Таким чином, виживаність кріоконсервованих ооцитів не залежить від їх ступеня зрілості. Однак частота запліднення та бластуляції IVM ооцитів була нижчою, ніж у зрілих in vivo гамет. Встановлено, що IVM ооцитів доцільно проводити перед кріоконсервуванням, оскільки це дозволяє отримати більш високі показники частоти дозрівання, запліднення та розвитку ембріонів in vitro.
Probl Cryobiol Cryomed 2021; 31(2): 161–167
Посилання
Ajduk A, Małagocki A, Maleszewski M. Cytoplasmic maturation of mammalian oocytes: development of a mechanism responsible for sperm-induced Ca2+ oscillations. Reprod Biol. 2008; 8:3-22. CrossRef
Brambillasca F, Guglielmo MC, Coticchio G et al. The current challenges to efficient immature oocyte cryopreservation. J Assist Reprod Genet. 2013; 30(12): 1531-9. CrossRef
Buderatska N, Gontar J, Ilyin I, et al. Does human oocyte cryopreservation affect equally on embryo chromosome aneuploidy? Cryobiology. 2020; 93: 33-6. CrossRef
Chian RC, Gilbert L, Huang JY, et al. Live birth after vitrification of in vitro matured human oocytes. Fertil Steril. 2009; 91: 372-6. CrossRef
Fasano G, Dechène J, Antonacci R, et al. Outcomes of immature oocytes collected from ovarian tissue for cryopreservation in adult and prepubertal patients. Reprod Biomed Online. 2017; 34(6): 575-82. CrossRef
Fasano G, Demeestere I, Englert Y. In-vitro maturation of human oocytes: before or after vitrification? J Assist Reprod Genet. 2012; 29: 507-12. CrossRef
Jones KT, Carroll J, Whittingham DG. Ionomycin, thapsigargin, ryanodine, and sperm induced Ca2+ release increase during meiotic maturation of mouse oocytes. J Biol Chem. 1995; 270(12): 6671-7. CrossRef
Kuwayama M, Vajta G, Kato O, et al. Highly efficient vitrification method for cryopreservation of human oocytes. Reprod Biomed Online. 2005; 11(3): 300-8. CrossRef
Lee JA, Sekhon L, Grunfeld L, et al. In-vitro maturation of germinal vesicle and metaphase I eggs prior to cryopreservation optimizes reproductive potential in patients undergoing fertility preservation. Curr Opin Obstet Gynecol. 2014; 26(3): 168-73. CrossRef
McLaughlin M, Albertini DF, Wallace WHB, et al. Metaphase II oocytes from human unilaminar follicles grown in a multi-step culture system. Mol Hum Reprod. 2018; 24(3): 135-42. CrossRef
Mohsenzadeh M, Tabibnejad N, Vatanparast M, et al. Vitrification has detrimental effects on maturation, viability, and subcellular quality of oocytes post IVM in cancerous women: an experimental study. Int J Reprod Biomed (Yazd). 2019; 17(3): 175-84. CrossRef
Molina I, Gómez J, Balasch S, et al. Osmotic-shock produced by vitrification solutions improves immature human oocytes in vitro maturation. Reprod Biol Endocrinol [Internet]. 2016 May 11 [cited 2020 July 12]; 14(1): 27. Available from: https:// rbej.biomedcentral.com/articles/10.1186/s12958-016-0161- 1#citeas CrossRef
Morley P, Whitfield JF. The differentiation inducer, dimethyl sulfoxide, transiently increases the intracellular calcium ion concentration in various cell types. J Cell Physiol. 1993; 156: 219-22. CrossRef
Muñoz E, González N, Muñoz L, et al. Ovarian stimulation in patients with breast cancer. Ecancermedicalscience [Internet]. 2015 Feb 3 [cited 2020 July 07]; 9: 504. Available from: https:// ecancer.org/es/journal/article/504-ovarian-stimulation-in-patients-with-breast-cancer CrossRef
Paynter S. A rational approach to oocyte cryopreservation. Reprod Biomed Online. 2005; 10: 578-86. CrossRef
Petrushko MP, Yurchuk TO, Buderatska NO, et al. Oolemma invagination of fresh and cryopreserved human oocytes during in vitro fertilization by ICSI. Probl Cryobiol Cryomed. 2018; 28(3): 258-65. CrossRef
Petrushko M, Yurchuk T, Piniaiev V, Buderatska N. Cryopreservation of incomplete compacted morulae and preliminary biopsy of excluded fragments. Zygote. 2019; 27(6): 386-91. CrossRef
Rivas Leonel EC, Lucci CM, Amorim CA. Cryopreservation of human ovarian tissue: a review. Transfus Med Hemother. 2019; 46(3): 173-81. CrossRef
Takae S, Suzuki N. Current state and future possibilities of ovarian tissue transplantation. Reprod Med Biol. 2019; 18(3): 217-24. CrossRef
Takahashi T, Igarashi H, Doshida M, et al. Lowering intracellular and extracellular calcium contents prevents cytotoxic effects of ethyleneglycol based vitrifications olutioninun fertilized mouse oocytes. Mol Reprod Dev. 2004; 68: 250-8. CrossRef
Wang F, Yuan RY, Li L, et al. Mitochondrial regulation of [Ca2+]i oscillations during cell cycle resumption of the second meiosis of oocyte. Cell Cycle. 2018; 17(12): 1471-86. CrossRef
Yazdanpanah F, Khalili MA, Eftekhar M, et al. The effect of vitrification on maturation and viability capacities of immature human oocytes. Arch Gynecol Obstet 2013; 288: 439-44. CrossRef
Downloads
Опубліковано
Як цитувати
Номер
Розділ
Ліцензія
Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Автори, які публікуються у цьому журналі, погоджуються з наступними умовами:
- Автори залишають за собою право на авторство своєї роботи та передають журналу право першої публікації цієї роботи на умовах ліцензії Creative Commons Attribution License, котра дозволяє іншим особам вільно розповсюджувати опубліковану роботу з обов'язковим посиланням на авторів оригінальної роботи та першу публікацію роботи у цьому журналі.
- Автори мають право укладати самостійні додаткові угоди щодо неексклюзивного розповсюдження роботи у тому вигляді, в якому вона була опублікована цим журналом (наприклад, розміщувати роботу в електронному сховищі установи або публікувати у складі монографії), за умови збереження посилання на першу публікацію роботи у цьому журналі.
- Політика журналу дозволяє і заохочує розміщення авторами в мережі Інтернет (наприклад, у сховищах установ або на особистих веб-сайтах) рукопису роботи, як до подання цього рукопису до редакції, так і під час його редакційного опрацювання, оскільки це сприяє виникненню продуктивної наукової дискусії та позитивно позначається на оперативності та динаміці цитування опублікованої роботи (див. The Effect of Open Access).
