Експериментальна кріодеструкція щитовидної залози з пропілтіоурацил-індукованою дифузною гіперплазією

Автор(и)

  • Kostiantyn Pobielienskyi Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків
  • Oleksandr Pakhomov Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків; Харківський національний університет ім. В.Н. Каразіна, м. Харків https://orcid.org/0000-0002-7494-654X
  • Tetyana Gurina Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків
  • Liliia Pobielienska Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків; Харківський національний університет ім. В.Н. Каразіна, м. Харків
  • Ievgen Legach Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків
  • Galyna Bozhok Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків; Харківський національний університет ім. В.Н. Каразіна, м. Харків https://orcid.org/0000-0002-4188-9286

DOI:

https://doi.org/10.15407/cryo31.02.168

Ключові слова:

щитовидна залоза, кріодеструкція, пропілтіоурацил, дифузна гіперплазія, щури

Анотація

Кріодеструкція під контролем ендоскопічної техніки вважається перспективним підходом до лікування доброякісних вузлових утворень щитовидної залози (ЩЗ). Для визначення параметрів кріодеструкції необхідне проведення модельних експериментів на тваринах, оскільки патологічно змінена тканина ЩЗ відрізняється за теплопровідністю та теплоємністю від нормальної тканини. У роботі порівнювали температурні зміни в ЩЗ експериментальних тварин під час кріовпливу на нормальну тканину та при дифузній гіперплазії (ДГ), індукованій пропілтіоурацилом (ПТУ). Кріодеструкцію ЩЗ проводили щурам, які до цього втручання отримували 0,1% розчин ПТУ протягом 90 днів. Використовували мідний кріоаплікатор, охолоджений до температури рідкого азоту. Процес контролювали за допомогою термопар, розташованих на різній відстані від зони проморожування. Встановлено відмінності між термограмами зразків інтактної тканини ЩЗ та ПТУ-індукованої ДГ. Доведено, що для руйнування тканини ЩЗ із ДГ на глибину більше 1 мм необхідно проводити два цикли заморожування-нагріву з 120-секундною експозицією кріоаплікатора.

 

Probl Cryobiol Cryomed 2021; 31(2): 168–179

Біографії авторів

Kostiantyn Pobielienskyi, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріоендокринології

 

Oleksandr Pakhomov, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків; Харківський національний університет ім. В.Н. Каразіна, м. Харків

Відділ кріоендокринології

Tetyana Gurina, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріомікробіології

Liliia Pobielienska, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків; Харківський національний університет ім. В.Н. Каразіна, м. Харків

Відділ кріоендокринології

Ievgen Legach, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріоендокринології

Посилання

Balabolkin MI, Klebanova EM, Kreminskaya BM. [Fundamental and clinical thyroidology: a guide]. Moscow: Medicine, 2007. 816 p. Russian.

Bergenfelz A, Jansson S, Kristoffersson A, et al. Complications to thyroid surgery: results as reported in a database from a multicenter audit comprising 3,660 patients. Langenbecks Arch Surg 2008; 393 (5): 667-73. CrossRef

Borkowski M., Robinson MJ, Poppiti RJ, et al. Histologic findings in postcryosurgical prostatic biopsies. Mod Pathol. 1996; 9 (8): 807-11.

Butova OA, Botasheva VS, Golovko EM. [Pathological characteristics of the thyroid gland with endemic goiter]. Stavropol State University's Vestnik. 2010; (69):182-6. Russian.

Chizh NA. Endoscopic Cryosurgery. Probl Cryobiol Cryomed. 2017; 27(1): 3-18. CrossRef

Erinjeri JP, Clark TW. Cryoablation: mechanism of action and devices. J Vasc Interv Radiol. 2010; 21 (8, Suppl): S187-S191. CrossRef

Gage AA, Baust JG. Cryosurgery - a review of recent advances and current issues. Cryo Letters. 2002; 23(2): 69-78. PubMed

Gage AA, Baust J. Mechanisms of tissue injury in cryosurgery. Cryobiology. 1998; 37 (3): 171-86. CrossRef

Garberoglio R, Aliberti C, Appetecchia M, et al. Radiofrequency ablation for thyroid nodules: which indications? The first Italian opinion statement. J Ultrasound. 2015;18 (4): 423-30. CrossRef

Hamed MS, Mansour SZ, Halawa MR, et al. Cryoablation of goiter irrespective of thyroid profile. Thyroid Res Pract. 2019; 16 (1): 6-11. CrossRef

Khaziyev VV, Tjazhelova OV, Makedonskaya VA. Sonographic changes in structure and volume of thyroid gland after local intrasurgical cryoexposure in patients with nodular euthyroid goiter. Probl Cryobiol Cryomed. 2013; 23 (3): 240-6. Full Text

Kim C, O'Rourke AP, Mahvi DM, et al. Finite-element analysis of ex vivo and in vivo hepatic cryoablation. IEEE Trans Biomed Eng. 2007; 54(7): 1177-85. CrossRef

Korzhevskij DE, Gilyarov AV. [Fundamentals of histological technique]. St Petersburg: SpecLit,, 2015. 807 p. Russian.

Laezza C, Mazziotti G, Fiorentino L, et al. HMG-CoA reductase inhibitors inhibit rat propylthiouracil-induced goiter by modulating the ras-MAPK pathway. Mol Med (Berl). 2006; 84 (11): 967-73. CrossRef

Morelli F, Sacrini A, Pompili G, et al. Microwave ablation for thyroid nodules: a new string to the bow for percutaneous treatments? Gland Surg. 2016; 5(6): 553-8. CrossRef

Pobelensky KO, Kolot NV, Protsenko ES, et al. [Dynamics of morphological parameters of the thyroid gland in hypertensive SHR rats upon administration of propylthiouracil]. Morphologia. 2019; 13 (3): 93-8. Ukrainian. CrossRef

Polychronakos C, Guyda HJ, Patel B, et al. Increase in the number of type II insulin-like growth factor receptors during propylthiouracil-induced hyperplasia in the rat thyroid. Endocrinology. 1986; 119 (3): 1204-9. CrossRef

Pomorski L, Bartos M, Amsolik M, et al. Thyroid cryotherapy in an experimental rat model-topography of temperature during therapy and functional results. Cryobiology. 2000; 41 (1): 51-7. CrossRef

Pomorski L, Bartos M, Matejkowska M, et al. Thyroid cryotherapy in an experimental rat model. Cryobiology. 1999; 39 (3): 262-70. CrossRef

Rognoni JB, Penel C, Bastiani P, et al. Involution of hyperplastic goitre in the adult male rat. Tissue compartment process with early iodide effect: a stereological and biochemical study. Arch B Cell Pathol Incl Mol Pathol. 1987; 53 (3): 166-75. CrossRef

Sabel MS. Cryo-immunology: A review of the literature and proposed mechanisms for stimulatory versus suppressive immune responses. Cryobiology. 2009; 58 (1): 1-11. CrossRef

Tegler L, Gillquist J, Anderberg B, Lundström B, Johansson H. Thyroid blood flow rate in man. Electromagnetic flowmetry during operation in euthyroid normal gland, nontoxic goiter, and hyperthyroidism. J Endocrinol Invest. 1981; 4(3): 335-41. CrossRef

Valcavi R, Frasoldati A. Ultrasound-guided percutaneous ethanol injection therapy in thyroid cystic nodules. Endocr Pract. 2004; 10 (3): 269-75. CrossRef

Valcavi R, Riganti F, Bertani A, et al. Percutaneous laser ablation of cold benign thyroid nodules: a 3-year follow-up study in 122 patients. Thyroid. 2010; 20 (11):1253-61. CrossRef

Vita R, Di Bari F, Perelli S, et al. Thyroid vascularization is an important ultrasonographic parameter in untreated Graves' disease patients. J Clin Transl Endocrinol. 2019;15: 65- 9. CrossRef

Zhang YT, Liu J, Zhou YX. Pilot study on cryogenic heat transfer in biological tissues embedded with large blood vessels. Forschung Im Ingenieurwesen. 2002; 67(5): 188-97. CrossRef

Downloads

Опубліковано

2021-07-15

Як цитувати

Pobielienskyi, K., Pakhomov, O., Gurina, T., Pobielienska, L., Legach, I., & Bozhok, G. . (2021). Експериментальна кріодеструкція щитовидної залози з пропілтіоурацил-індукованою дифузною гіперплазією. Проблеми кріобіології і кріомедицини, 31(2), 168–179. https://doi.org/10.15407/cryo31.02.168

Номер

Розділ

Кріомедицина, клінічна та експериментальна трансплантологія