Культуральні властивості кріоконсервованих мультипотентних стромальних клітин тимуса і фетальних клітин шкірно-м’язового походження

Автор(и)

  • Valentina Nikolska ДУ «Інститут генетичної та регенеративної медицини НАМН України», Київ
  • Yanina-Maria Semenova ДУ «Інститут генетичної та регенеративної медицини НАМН України», Київ
  • Lyuba Taranukha ДУ «Інститут генетичної та регенеративної медицини НАМН України», Київ
  • Ihor Nikolsky ДУ «Інститут генетичної та регенеративної медицини НАМН України», Київ

DOI:

https://doi.org/10.15407/cryo31.03.249

Ключові слова:

кріоконсервування, мультипотентні стромальні клітини тимуса, фетальні шкірно-м’язові мультипотентні стромальні клітини, культуральні властивості

Анотація

У роботі надано порівняльну характеристику властивостей мишиних кріоконсервованих шкірно-м’язових фетальних мультипотентних стромальних клітин (МСК) і МСК дорослого тимуса в культурі in vitro. У фетальних МСК спостерігається на 30% більша середня кількість подвоєнь за 24 години і на 41% менша середня тривалість подвоєнь. Встановлено, що фетальні МСК 4-го пасажу мають на 39% більшу клоногенну активність, ніж МСК дорослого тимуса. Фетальні МСК і МСК дорослого тимуса дорослої тварини диференціюються у спеціальних середовищах однаково ефективно за остео- і адипогенним напрямками. Фетальні МСК і МСК тимуса характеризуються практично однаковою високою здатністю до контактної взаємодії з тимоцитами, утворення фібробластолімфоцитарних розеток (ФЛР) і є значно менш активними у формуванні ФЛР із клітинами лімфатичних вузлів. Це свідчить про наявність у обох субпопуляцій МСК мембранної спорідненості до незрілих лімфоїдних клітин. Результати показали, що фетальні МСК помітно відрізняються від МСК дорослого тимуса дорослої тварини за активнішою кінетикою росту та клоногенним потенціалом, але обидві субпопуляції клітин мають практично однакову здатність до лінійного диференціювання і проявляють високу активність під час контактної взаємодії з незрілими лімфоїдними клітинами. Встановлено, що лінійне диференціювання і здатність до контактної взаємодії з лімфоцитами є достатньо стабільними властивостями МСК, а проліферативна активність і колонієутворення in vitro суттєво відрізняються у різних типів МСК, що може бути враховано під час вибору клітин для терапії, досліджень і оцінки їх результатів.

 

Probl Cryobiol Cryomed 2021; 31(3): 249–257

Посилання

Aizenshtadt AA, Skazina MA, Kotelevskaya EA, et al. Characterization of umbilical cord mesenchymal stromal cells during long-term expansion in vitro. Herald of North-Western State Medical University named after I.I. Mechnikov. 2018;10(1):11- 9. Russian

CrossRef

Bifari F, Lisi V, Mimiola E, et al. Immune modulation by mesenchymal stem cells. Transfus Med Hemother. 2008; 35(3): 194-204.

CrossRef

Brown C, McKee C, Bakshi S, et al. Mesenchymal stem cells: cell therapy and regeneration potential. J Tissue Eng Regen Med. 2019; 13(9): 1738-55.

CrossRef

Freshney RJ. Culture of animal cells. Moscow: Binom. Laboratoriya Znanii; 2010. 691 p. Russian.

Goltsev AN, Dubrava TG, Kozlova YuA, et al. Investigation of the therapeutic effect of transfusion of cryopreserved hematopoietic stem cells from different sources in the treatment of experimental adjuvant arthritis. Transplantology. 2007; 9 (1): 28-30. Russian.

Goltsev AN, Rassokha IV, Lutsenko ED, et al. Intercellular interactions in immunocompetent sphere at rheumatoid arthritis following the application of hematopoietic embryonic liver cells. Problems of Cryobiology. 2003; (3): 45-53.

Full Text

Gregory CA, Gunn WG, Peister A, Prockop DJ. An Alizarin red-based assay of mineralization by adherent cells in culture: comparison with cetylpyridinium chloride extraction. Anal Biochem. 2004; 329(1): 77-84.

CrossRef

Grishchenko VI, Lobyntseva GS, Votyakova IA, Shereshkov SI. Hematopoietic cells of the embryonic liver. Kyiv: Naukova dumka; 1988.

Grzhibovsky AM, Ivanov SV, Gorbatova MA. Analysis of quantitative data in two independent samples using Statistica and SPSS software: parametric and non-parametric tests. Science & Healthcare. 2016; (2): 5-28. Russian.

Jacobs SA, Roobrouck VD, Verfaillie CM, Van Gool SW. Immunological characteristics of human mesenchymal stem cells and multipotent adult progenitor cells. Immunol Cell Biol. 2013; 91(1): 32-9.

CrossRef

Kim WK, Jung H, Kim DH, et al. Regulation of adipogenic differentiation by LAR tyrosine phosphatase in human mesenchymal stem cells and 3T3-L1 preadipocytes. J Cell Sci. 2009; 122 (22): 4160-7.

CrossRef

Le Blanc K, Mougiakakos D. Multipotent mesenchymal stromal cells and the innate immune system. Nat Rev Immunol. 2012; 12(5): 383-96.

CrossRef

Nikolska KI. Peculiarities of culture and in vitro contact interaction of cryopreserved thymic multipotent stromal cells and hemopoietic cells. Probl Cryobiol Cryomed. 2018;28(1):5-13.

CrossRef

Nikolskaya EI, Butenko GM. Structural-functional organisation of the bone marrow hematopoietic stem cells niches. Cell and Organ Transplantology 2016; 4(1): 82-100.

CrossRef

Nikolsky IS, Nikolskaya VV, Zubov DA. Fibroblast and mastolymphocytic rosettes. Russian Journal of Allergy. 2011; 1 (4): 260-1. Russian.

Panchenko LM, Sych EE, Yatsenko AP. Efficiency of cloning of human bone marrow stromal stem cells in the presence of highly porous glass ceramics and its ex vivo solubility. Herald of Orthopaedics, Traumatology and Prosthetics. 2014; (4): 50-4.

Patenaude J, Perreault C. Thymic mesenchymal cells have a distinct transcriptomic profile. J Immunol. 2016; 196(11): 4760- 70.

CrossRef

Petrenko YA, Tarasov AI, Grischenko VI, Petrenko AY. Cryopreservation effect on immunologic activity and phenotypic composition of human embryonic liver lymphoid cells. Probl Cryobiol Cryomed. 2002; (4): 76-9.

Full Text

Prockop DJ, Phinney DG, Bunnell BA. Mesenchymal stem cells: methods and protocols. Totowa: Humana Press; 2008. 192 p.

CrossRef

Rebrova OY. Statistical analysis of medical data: application of the Statistica software package. Moscow: Media Sfera; 2002. 312 p. Russian.

Robey P. 'Mesenchymal stem cells': fact or fiction, and implications in their therapeutic use. F1000Res. 2017; 20(6): F1000 Faculty Rev-524.

CrossRef

Wolfrom C, RaynaudN, Maigne J, et al. Periodic fluctuations in proliferation of SV-40 transformed human skin fibroblast lines with prolonged lifespan. Cell Biol Toxicol. 1994; 10(4): 247-54

CrossRef

Downloads

Опубліковано

2021-10-08

Як цитувати

Nikolska, V., Semenova , Y.-M., Taranukha, L., & Nikolsky, I. (2021). Культуральні властивості кріоконсервованих мультипотентних стромальних клітин тимуса і фетальних клітин шкірно-м’язового походження . Проблеми кріобіології і кріомедицини, 31(3), 249–257. https://doi.org/10.15407/cryo31.03.249

Номер

Розділ

Кріоконсервування біологічних систем