Реактивація метаболізму в еритроцитах після кріоконсервування з поліетиленгліколем: стан білків та утворення активних форм кисню

Автор(и)

DOI:

https://doi.org/10.15407/cryo32.02.092

Ключові слова:

еритроцит, мембрана, цитоскелет, білки, активні форми кисню, кріопротектор, поліетиленгліколь, кріоконсервування

Анотація

Досліджено утворення активних форм кисню (АФК) і стан білків мембрано-цитоскелетного комплексу (МЦК) в еритроцитах, підданих заморожуванню-відігріванню з поліетиленгліколем (ПЕГ) і в подальшому після видалення кріопротекторного агента перенесених у фізіологічні умови in vitro. Результати SDS-ПААГ-електрофорезу з застосуванням β-меркаптоетанолу показали зниження вмісту спектрину в профілі МЦК кріоконсервованих еритроцитів. Використання діаміду виявило підвищення доступності −SH-груп спектрину до дії реагенту та зростання рівня високомолекулярних поліпептидних комплексів відносно контролю. Зниження вмісту білка смуги 8 (пероксиредоксину) в МЦК еритроцитів, виявлене за допомогою SDS-ПААГ електрофорезу із застосуванням β-меркаптоетанолу, вочевидь, пов’язується зі зміною його локалізації за умов підвищення утворення АФК на попередніх етапах кріоконсервування. Разом з тим під час короткочасної активації метаболізму відсутність істотних змін рівня АФК свідчить про здатність кріоконсервованих клітин контролювати окиснювальні процеси.

Probl Cryobiol Cryomed 2022; 32(2):092103

Біографії авторів

Nina Zemlianskykh, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріоцитології

Lyubov Babijchuk, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріоцитології

Посилання

An X, Gauthier E, Zhang X, et al. Adhesive activity of Lu glycoproteins is regulated by interaction with spectrin. Blood. 2008; 112(13): 5212-8. CrossRef

An X, Guo X, Zhang X, et al. Conformational stabilities of the structural repeats of erythroid spectrin and their functional implications. J Biol Chem. 2006; 281(15): 10527-32. CrossRef

Babijchuk LA, Zemlianskykh NG. Optimization and advantages of washing-out method of erythrocyte cryopreservation with PEO-1500. Problems of Cryobiology. 2001; (1): 35-41.

Bennett V, Baines AJ. Spectrin and ankyrin-based pathways: metazoan inventions for integrating cells into tissues. Physiol Rev. 2001; 81(3): 135-92. CrossRef

Fairbanks G, Steck TL, Wallach D. Electrophoretic analysis of the major polypeptides of the human erythrocyte membrane. Biochemistry. 1971; 10(13): 2606-17. CrossRef

Falko OV, Zemlianskykh NG, Lipina OV, Prokopyuk OS. Modification of placental blood serum proteins induced by low temperatures. Biochemistry Suplement Series B: Biomedical Chemistry. 2012; 6(2): 194-202. CrossRef

George A, Pushkaran S, Konstantinidis DG, et al. Erythrocyte NADPH oxidase activity modulated by Rac GTPases, PKC, and plasma cytokines contributes to oxidative stress in sickle cell disease. Blood. 2013; 121(11): 2099-107. CrossRef

Haest CW, Kamp D, Plasa G, Deuticke B. Intra- and intermolecular cross-linking of membrane proteins in intact erythrocytes and ghosts by −SH-oxidizing agents. Biochim Biophys Acta. 1977; 469(2): 226-30. CrossRef

Henkelman S, Noorman F, Badloe JF, Lagerberg JW. Utilization and quality of cryopreserved red blood cells in transfusion medicine. Vox Sang. 2015; 108(2). 103-12. CrossRef

Kanias T, Acker JP. Biopreservation of red blood cells - the struggle with hemoglobin oxidation. FEBS J. 2010; 277(2): 343-56. CrossRef

Kucherenko YV, Bernhardt I. The study of Ca2+ influx in human erythrocytes in isotonic polyethylene (glycol) 1500 (PEG-1500) and sucrose media. Ukr Biokhim Zh. 2006; 78(6): 46-52. PubMed

Lux IV Samuel E. Anatomy of the red cell membrane skeleton: unanswered questions. Blood. 2016; 127(2): 187-99. CrossRef

Panday A, Sahoo MK, Osorio D, Batra S. NADPH oxidases: an overview from structure to innate immunity-associated pathologies. Cell Mol Immunol. 2015; 12(1): 5-23. CrossRef

Peskin AV, Dickerhof N, Poynton RA, et al. Hyperoxidation of peroxiredoxins 2 and 3: rate constants for the reactions of the sulfenic acid of the peroxidatic cysteine. J Biol Chem. 2013; 288(20): 14170-7. CrossRef

Rhee SG. Overview on peroxiredoxin. Mol Cells. 2016; 39(1): 1-5. CrossRef

Scott KL, Lecak J, Acker JP. Biopreservation of red blood cells: past, present, and future. Transfus Med Rev. 2005; 19(2): 127-42. CrossRef

Sharma S, Punjabi V, Zingde SM, Gokhale SM. A comparative protein profi le of mammalian erythrocyte membranes identified by mass spectrometry. J Membr Biol 2014; 247(11): 1181-9. CrossRef

Sies H. Role of metabolic H2O2 generation: redox signaling and oxidative stress. J Biol Chem 2014; 289(13): 8735-41. CrossRef

Singbartl K, Langer R, Henrich A. Altered membrane skeleton of hydroxyethylstarch-cryopreserved human erythrocytes. Cryobiology. 1998; 36(2): 115-23. CrossRef

Svetina S, Kuzman D, Waugh RE, et al. The cooperative role of membrane skeleton and bilayer in the mechanical behaviour of red blood cells. Bioelectrochemistry. 2004; 62(2): 107-13. CrossRef

Welbourn EM, Wilson MT, Yusof A, et al. The mechanism of formation, structure and physiological relevance of covalent hemoglobin attachment to the erythrocyte membrane. Free Radic Biol Med. 2017; 103: 95-106. CrossRef

Zemlianskykh NG. Regulation of the asymmetric distribution of lipids in human erythrocyte membrane in the presence of glycerol and polyethylene glycol. Cell Tiss Biol. 2020; 14(4): 286-93. CrossRef

Zemlianskykh NG. [The effect of cryoprotective agents on proteins of the erythrocyte membrane-cytoskeleton complex]. Biomed Khim. 2020; 66(6): 456-63. Russian. CrossRef

Zemlianskykh NG, Babiychuk LA. The changes in erythrocyte Ca2+-ATPase activity induced by PEG-1500 and low temperatures. Cell Tiss Biol. 2017; 11(2): 104-10. CrossRef

Zemlianskykh NG, Babiychuk LA. The production of reactive oxygen species in human erythrocytes during cryopreservation with glycerol and polyethylene glycol. Biophysics. 2019; 64(4): 560-7. CrossRef

Downloads

Опубліковано

2022-10-30

Як цитувати

Zemlianskykh, N., & Babijchuk, L. (2022). Реактивація метаболізму в еритроцитах після кріоконсервування з поліетиленгліколем: стан білків та утворення активних форм кисню . Проблеми кріобіології і кріомедицини, 32(2), 92–103. https://doi.org/10.15407/cryo32.02.092

Номер

Розділ

Теоретична та експериментальна кріобіологія