Кріолізат пухлинних клітин: від технології отримання до створення протиракових вакцин
Ключові слова:
аденокарцинома Ерліха, кріолізат, мононуклеари, імунні дендритні клітини, культивуванняАнотація
Доведена можливість отримання імунних дендритних клітин (іДК) із мононуклеарів кісткового мозку за умов додавання в культуру гранулоцитарно-макрофагального колонієстимулюючого фактору, інтерлейкіну-4 та кріолізату пухлинних клітин як індуктора їх дозрівання. Джерелом пухлинних антигенів для одержання іДК був кріолізат клітин аденокарциноми Ерліха, який отримували шляхом їх 5-разового заморожування-відтавання. Встановлено, що диференціювання мононуклеарів у іДК супроводжується втратою CD14-антигена, появою характерних для цих клітин маркерів зрілості (CD83-, CD11с-антигенів) та збільшенням експресії костимуляторних молекул (CD80, CD86). Результати дослідження дають можливість не тільки оцінити якісні характеристики отриманих у такий спосіб іДК, але й окреслити перспективи їх застосування в імунокорекції онкопатології.
Probl Cryobiol Cryomed 2024; 34(3):226–235
Посилання
Alspach E, Lussier DM, Miceli AP, et al. MHC-II neoantigens shape tumour immunity and response to immunotherapy. Nature. 2019; 574(7780): 696-701. CrossRef
Bourque J, Hawiger D. Activation, amplification, and ablation as dynamic mechanisms of dendritic cell maturation. Biology (Basel). [Internet]. 2023 May 14 [Cited 20.05.2024]; 12(5): 716. Available from: https://www.mdpi.com/2079-7737/12/5/716 CrossRef
Cao WJ, Dai JY, Dong WJ, et al. [Effects of Dasatinib on the maturation of monocyte-derived dendritic cells derived from healthy donors and chronic myelogenous leukemia patients]. Zhongguo Shi Yan Xue Ye Xue Za Zhi. 2022; 30(3): 677-687. Chinese. CrossRef
Date I, Koya T, Sakamoto T, et al. Interferon-α-induced dendritic cells generated with human platelet lysate exhibit elevated antigen presenting ability to cytotoxic T lymphocytes. Vaccines (Basel) [Internet]. 2020 Dec 24 [Cited 20.05.2024]; 9(1): 10. Available from: https://www.mdpi.com/2076-393X/9/1/10 CrossRef
Dillman RO, Cornforth AN, McClay EF, Depriest C. Patient-specific dendritic cell vaccines with autologous tumor antigens in 72 patients with metastatic melanoma. Melanoma Manag [Internet]. 2019 May 31 [Cited 20.05.2024]; 6(2): MMT20. Available from: https://www.futuremedicine.com/doi/full/10.2217/mmt-2018-0010 CrossRef
Dorrie J, Schaft N, Schuler G, Schuler-Thurner B. Therapeutic cancer vaccination with ex vivo rna-transfected dendritic cells-an update. Pharmaceutics [Internet]. 2020 Jan 23 [Cited 20.05.2024]; 12(2): 92. Available from: https://www.mdpi.com/1999-4923/12/2/92 CrossRef
Gardner A, de Mingo Pulido Á, Ruffell B. Dendritic cells and their role in immunotherapy. Front Immunol [Internet]. 2020 May 21 [Cited 20.05.2024]; 11: 924. Available from: https://www.frontiersin.org/journals/immunology/articles/10.3389/fimmu.2020.00924/full CrossRef
Goltsev AN, Dubrava TG, Yampolskaya EE, et al. [The optimization method of isolation of immature dendritic cells]. Fiziol. Zh. 2018; (6): 33-40. Ukrainian. CrossRef
Jarnjak-Jankovic S, Pettersen RD, Saebøe-Larssen S, et al. Preclinical evaluation of autologous dendritic cells transfected with mRNA or loaded with apoptotic cells for immunotherapy of high-risk neuroblastoma. Cancer Gene Ther. 2005; 12(8): 699-707. CrossRef
Obermaier B, Dauer M, Herten J, et al. Development of a new protocol for 2-day generation of mature dendritic cells from human monocytes. Biol Proced Online. 2003; 5: 197-203. CrossRef
Perez CR, De Palma M. Engineering dendritic cell vaccines to improve cancer immunotherapy. Nat Commun [Internet]. 2019 Nov 27 [Cited 20.05.2024]; 10(1): 5408. Available from: https://www.nature.com/articles/s41467-019-13368-y CrossRef
Rapp M, Grauer OM, Kamp M, et al. A randomized controlled phase II trial of vaccination with lysate-loaded, mature dendritic cells integrated into standard radiochemotherapy of newly diagnosed glioblastoma (GlioVax): study protocol for a randomized controlled trial. Trials [Internet]. 2018 May 25 [Cited 20.05.2024]; 19(1): 293. Available from: https://trialsjournal.biomedcentral.com/articles/10.1186/s13063-018-2659-7 CrossRef
Sallusto F, Lanzavecchia A. Efficient presentation of soluble antigen by cultured human dendritic cells is maintained by granulocyte/macrophage colony-stimulating factor plus interleukin 4 and downregulated by tumor necrosis factor alpha. J Exp Med. 1994; 179(4): 1109-18.
Sorg RV, Ozcan Z, Brefort T, et al. Clinical-scale generation of dendritic cells in a closed system. J Immunother. 2003; 26(4): 374-83. CrossRef
Sugiura D, Maruhashi T, Okazaki IM, et al. Restriction of PD-1 function by cis-PD-L1/CD80 interactions is required for optimal T cell responses. Science. 2019; 364(6440): 558-66. CrossRef
Sutherland SIM, Ju X, Horvath LG, Clark GJ. Moving on from Sipuleucel-T: new dendritic cell vaccine strategies for prostate cancer. Front Immunol [Internet]. 2021 Mar 29 [Cited 20.05.2024]; 12: 641307. Available from: https://www.frontiersin.org/journals/immunology/articles/10.3389/fimmu.2021.641307/full CrossRef
Ueno H, Klechevsky E, Morita R, et al. Dendritic cell subsets in health and disease. Immunol Rev. 2007; 219: 118-42. doi: 10.1111/j.1600-065X.2007.00551.x CrossRef
Van Tendeloo VF, Ponsaerts P, Lardon F, et al. Highly efficient gene delivery by mRNA electroporation in human hematopoietic cells: superiority to lipofection and passive pulsing of mRNA and to electroporation of plasmid cDNA for tumor antigen loading of dendritic cells. Blood. 2001; 98(1): 49 -56. CrossRef
Wang Y, Xiang Y, Xin VW, et al. Dendritic cell biology and its role in tumor immunotherapy. J Hematol Oncol [Internet]. 2020 Aug 3 [Cited 20.05.2024]; 13(1): 107. Available from: https://jhoonline.biomedcentral.com/articles/10.1186/s13045-020-00939-6 CrossRef
Wculek SK, Cueto FJ, Mujal AM, et al. Dendritic cells in cancer immunology and immunotherapy. Nat Rev Immunol. 2020; 20(1): 7-24. CrossRef
Westdorp H, Creemers JHA, van Oort IM, et al. Blood-derived dendritic cell vaccinations induce immune responses that correlate with clinical outcome in patients with chemo-naive castration-resistant prostate cancer. J Immunother Cancer [Internet]. 2019 Nov 14 [Cited 20.05.2024]; 7(1): 302. Available from: https://jitc.bmj.com/content/7/1/302.long CrossRef
Downloads
Опубліковано
Як цитувати
Номер
Розділ
Ліцензія
Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Автори, які публікуються у цьому журналі, погоджуються з наступними умовами:
- Автори залишають за собою право на авторство своєї роботи та передають журналу право першої публікації цієї роботи на умовах ліцензії Creative Commons Attribution License, котра дозволяє іншим особам вільно розповсюджувати опубліковану роботу з обов'язковим посиланням на авторів оригінальної роботи та першу публікацію роботи у цьому журналі.
- Автори мають право укладати самостійні додаткові угоди щодо неексклюзивного розповсюдження роботи у тому вигляді, в якому вона була опублікована цим журналом (наприклад, розміщувати роботу в електронному сховищі установи або публікувати у складі монографії), за умови збереження посилання на першу публікацію роботи у цьому журналі.
- Політика журналу дозволяє і заохочує розміщення авторами в мережі Інтернет (наприклад, у сховищах установ або на особистих веб-сайтах) рукопису роботи, як до подання цього рукопису до редакції, так і під час його редакційного опрацювання, оскільки це сприяє виникненню продуктивної наукової дискусії та позитивно позначається на оперативності та динаміці цитування опублікованої роботи (див. The Effect of Open Access).
