ВлиÑние раÑтворов криопротекторов на выживаемоÑÑ‚ÑŒ и тератогенноÑÑ‚ÑŒ Ñмбрионов караÑÑ (Carassius auratus gibelio Bloch, 1783)
DOI:
https://doi.org/10.15407/cryo24.02.149Ключові слова:
ембріони, караÑÑŒ, кріопротектор, виживаніÑÑ‚ÑŒ, тератогенніÑÑ‚ÑŒАнотація
ДоÑліджено вплив розчинів кріопротекторів, Ñкі належать до різних клаÑів хімічних речовин, на виживаніÑÑ‚ÑŒ Ñ– аномальний розвиток ембріонів караÑÑ (Carassius auratus gibelio Bloch, 1783) на Ñтадії розвитку, що відповідає 6 Ñомітам. ПротÑгом 60 хв ембріони інкубували в 10%-Ñ… розчинах кріопротекторів диметилÑульфокÑиду (ДМСО), 1,2-пропандіолу (1,2-ПД), 1,3-пропандіолу (1,3 ПД), 1,3-бутандіолу (1,3-БД), 1,4 бутандіолу (1,4-БД), 1,2-метаокÑіетану (1,2-МОЕ), гліцерину, етиленгліколю (ЕГ), метанолу, поліетиленокÑиду (ПЕО-1500) Ñ– Ñахарози. ПіÑÐ»Ñ Ñ†ÑŒÐ¾Ð³Ð¾ ембріони відмивали Ñ– проÑтежували розвиток до Ñтадії вільно плаваючою личинки. Ðайбільший рівень виживаноÑÑ‚Ñ– ембріонів караÑÑ (54–67%) ÑпоÑтерігавÑÑ Ñƒ 10%-Ñ… розчинах кріопротекторів 1,2-ПД, 1,3-ПД, ÐГ, ПÐО-1500, Ñахарози, що забезпечували рівень Ð·Ð±ÐµÑ€ÐµÐ¶ÐµÐ½Ð½Ñ ÐµÐ¼Ð±Ñ€Ñ–Ð¾Ð½Ñ–Ð², що нормально розвивалиÑÑ, близький до контрольного. Розчини кріопротекторів 1,3-БД, 1,4-БД мали більшу токÑичніÑÑ‚ÑŒ –рівень Ð²Ð¸Ð¶Ð¸Ð²Ð°Ð½Ð½Ñ Ð² них Ñклав 40–49%. У розчинах кріопротекторів 1,2-МОЕ, ДМСО, гліцерину Ñ– метанолу рівень Ð²Ð¸Ð¶Ð¸Ð²Ð°Ð½Ð½Ñ ÐµÐ¼Ð±Ñ€Ñ–Ð¾Ð½Ñ–Ð² був мінімальним. Ðайбільший рівень тератогенних ембріонів ÑпоÑтерігали піÑÐ»Ñ Ñ–Ð½ÐºÑƒÐ±Ð°Ñ†Ñ–Ñ— в розчинах кріопротекторів 1,2-МОЕ та метанолу.
Посилання
Adam M.M., Rana K.J., McAndrew B.J. Effect of cryoprotectants on activity of selected enzymes in fish embryos. Cryobiology 1995; 32(1): 92–104. CrossRef
Ahammad M.M., Bhattacharyya D., Banerjee R.D., Bandyopadhyay P.K. Toxicity of protectants to embryos of silver carp after cold storage at different storage time periods. Cell Preservation Technology 2004; 2(3): 227–233. CrossRef
Bart A.N. The use of ultrasound to enhance transport of compounds into fish and fish embryos: a review. Asian Fisheries Science 2001; 14(4): 389–397.
Bart A.N. New approaches in cryopreservation of fish embryos. In: The World Aquaculture Society: Cryopreservation in Aquatic Species. Louisiana, Baton Rouge 2000; p. 179–187.
Cabrita E., Chereguini O., Luna M.J. et al. Effect of different treatments on the chorion permeability to DMSO of turbot embryos (Scophthalmus maximus). Aquaculture 2003; 221(1–4): 593–604. CrossRef
Ding F.H., Xiao Z.Z., Li J. Preliminary studies on the vitrification of red sea bream (Pagrus major) embryos. Theriogenology 2007; 68(5): 702–708. CrossRef PubMed
Fahy G.M., Lilley T.H., Linsdell H. et al. Cryoprotectant toxicity and cryoprotectant toxicity reduction: In search of molecular mechanisms. Cryobiology 1990; 27(3): 247–268. CrossRef
Fahy G.M., Wowk B., Wu J., Paynter S. Improved vitrification solutions based on the predictability of vitrification solution toxicity. Cryobiology 2004; 48(1): 22–35. CrossRef PubMed
Gerasimov J.L. Fundamentals of Fisheries. Samara: Samara University; 2003.
Hagedorn M., Kleinhans F.W. Problems and prospects in cryopreservation of fish embryos. In: The World Aquaculture Society: Cryopreservation in Aquatic Species. Louisiana, Baton Rouge 2000; p. 161–178.
Hagedorn M., Kleinhans F.W., Artemov D., Pilatus U. Characte-rization of a major permeability barrier in the zebrafish embryo. Biol Reprod 1998; 59(5): 1240–1250. CrossRef PubMed
Hagedorn M., Hsu E.W., Kleinhans F.W., Wildt D.E. New approaches for studying permeability of fish embryos: Toward successful cryopreservation. Cryobiology 1997; 34(4): 335–347. CrossRef PubMed
Hagedorn M., Hsu E.W., Pilatus U. et al. Magnetic resonance microscopy and spectroscopy reveal kinetics of cryopro-tectant permeation in a multicompartment biological system. Proceedings Nat Acad Sci. USA; 1996; 93(15): 7454–7459. CrossRef
Leibo S.P. Cryopreservation of oocytes and embryos: Optimization by theoretical versus empirical analysis. Theriogenology 2008; 69(1): 37–47. CrossRef PubMed
Liu K.C., Chou T.C., Lin H.D. Cryosurvival of goldfish embryo after subzero freezing. Aquatic Living Resources 1993; 6(1): 63–66. CrossRef
Mikson K.B., Cherepanov V.V. Effect of cryoprotectant solutions on survival of crucian carp embryos. Problems of Cryobiology 2012; 22(3): 373.
Mikson K.B., Kopeika E.F., Ishkov G.S. Influence of cryoprotective medium components on the loach embryos (Misgurnus fossilis L., 1758). Interdepartmental thematic collection: Veterinary Medicine 2008; (89): 271–274.
Mikson K.B., Kopeika E.F., Linnik T.P. Conditions for loach (Misgurnus fossilis) embryos vitrification in cryoprotective media. Problems of Cryobiology 2009; 19(2): 154–162.
Mikson K.B., Kopeika E.F., Linnik T.P. Survival of Dwarf gouramy embryos (Colisa lalia) after incubation in cryoprotective media. Problems of Cryobiology 2008; 18(3): 343–345.
Mikson K.B., Zinchenko A.V., Bobrova E.N. Phase transitions and vitrification in cryoprotective media and embryos Misgurnus fossilis L., 1758. Problems of Cryobiology 2008; 18(2): 225.
Petrunkina A.M. Fundamental aspects of gamete cryobiology. J Reproduktionsmed Endokrinol 2007; 4(2): 78–91.
Robertson S.M., Lawrence A.L., Nell W.H. et al. Toxicity of the cryoprotectants glycerol, dimethyl sulfoxide, ethylene glycol, methanol, sucrose, and sea salt solutions to the embryos of red drum. Progressive Fish-Cult 1988; 50(3): 148–154. CrossRef
Veprintsev B.N., Novikov A.N., Uteshev V.K., Smolikhina T.I. DMSO effect at subzero temperatures on loach embryos. Kriobiologiya 1989; (2): 16–21.
Yamamoto K., Yamazaki F. Rhythm of development in the oocyte of the gold-fish, Carassius auratus. Bull Fac Fish Hokkaido Univ 1961; 12(2): 93–110.
Zhang T.T. Cryopreservation of gametes and embryos of aquatic species. In: Fuller B.J., Lane N., Benson E.E., editors. Life in the Frozen State. Florida: CRC Press LLC; 2004. p. 415–436. CrossRef
Zhang T.T., Rawson D.M. Permeability of dechorionated one–cell and six-somite stage zebrafish (Brachydanio rerio) embryos to water and methanol. Cryobiology 1998; 37(1): 13–21. CrossRef PubMed
Zhang T.T., Rawson D.M. Permeability of the vitelline membrane of zebrafish (Brachydanio rerio) embryos to methanol and propane-1,2-diol. CryoLetters 1996; 17(6): 273–280.
Downloads
Опубліковано
Як цитувати
Номер
Розділ
Ліцензія
Авторське право (c) 2020 Konstantin B. Mikson, Elena B. Revenko, Anna A. Gapon
Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Автори, які публікуються у цьому журналі, погоджуються з наступними умовами:
- Автори залишають за собою право на авторство своєї роботи та передають журналу право першої публікації цієї роботи на умовах ліцензії Creative Commons Attribution License, котра дозволяє іншим особам вільно розповсюджувати опубліковану роботу з обов'язковим посиланням на авторів оригінальної роботи та першу публікацію роботи у цьому журналі.
- Автори мають право укладати самостійні додаткові угоди щодо неексклюзивного розповсюдження роботи у тому вигляді, в якому вона була опублікована цим журналом (наприклад, розміщувати роботу в електронному сховищі установи або публікувати у складі монографії), за умови збереження посилання на першу публікацію роботи у цьому журналі.
- Політика журналу дозволяє і заохочує розміщення авторами в мережі Інтернет (наприклад, у сховищах установ або на особистих веб-сайтах) рукопису роботи, як до подання цього рукопису до редакції, так і під час його редакційного опрацювання, оскільки це сприяє виникненню продуктивної наукової дискусії та позитивно позначається на оперативності та динаміці цитування опублікованої роботи (див. The Effect of Open Access).
