Выбор условий криоконсервирования мезенхимальных стромальных клеток в суспензии и альгинатных микросферах на основе изучения их осмотических реакций в растворе 1 М ДМСО

Автор(и)

  • Dmitriy N. Tarusin Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків
  • Vitaliy A. Kireyev Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків
  • Svetlana Ye. Kovalenko Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків
  • Igor F. Kovalenko Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків
  • Leonid F. Rozanov Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків
  • Aleksandr Yu. Petrenko Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків

DOI:

https://doi.org/10.15407/cryo26.02.133

Ключові слова:

мезенхімальні стромальні клітини, альгінатні мікросфери, коефіцієнт проникності, фізико-математична модель

Анотація

ДоÑліджували оÑмотичну реакцію мезенхімальних Ñтромальних клітин (МСК) у ÑуÑпензії та альгінатних мікроÑферах (ÐМС) у процеÑÑ– екÑпозиції в 1 Ðœ розчині ДМСО, а також Ñ—Ñ… життєздатніÑÑ‚ÑŒ піÑÐ»Ñ ÐºÑ€Ñ–Ð¾ÐºÐ¾Ð½ÑÐµÑ€Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ Ð· різною швидкіÑÑ‚ÑŽ охолодженнÑ. ШлÑхом чиÑельного Ð¼Ð¾Ð´ÐµÐ»ÑŽÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ Ð²Ð¸Ð·Ð½Ð°Ñ‡ÐµÐ½Ð¾ коефіцієнт проникноÑÑ‚Ñ– мембран МСК Ð´Ð»Ñ Ð¼Ð¾Ð»ÐµÐºÑƒÐ» води та ДМСО, а також зміну об'єму клітин при різних швидкоÑÑ‚ÑÑ… охолодженнÑ. Показано, що Ð¾Ñ…Ð¾Ð»Ð¾Ð´Ð¶ÐµÐ½Ð½Ñ Ð·Ñ– швидкоÑÑ‚Ñми 0,5 та 1 град/хв до –40°С призводило до значної дегідратації клітин. ОÑмотична Ñ€ÐµÐ°ÐºÑ†Ñ–Ñ ÐœÐ¡Ðš у Ñкладі ÐМС була повільніша, ніж у ÑуÑпензії, що призводило до Ð·Ð½Ð¸Ð¶ÐµÐ½Ð½Ñ Ñ—Ñ… життєздатноÑÑ‚Ñ– піÑÐ»Ñ ÐºÑ€Ñ–Ð¾ÐºÐ¾Ð½ÑÐµÑ€Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ Ð·Ñ– швидкіÑÑ‚ÑŽ Ð¾Ñ…Ð¾Ð»Ð¾Ð´Ð¶ÐµÐ½Ð½Ñ 1 град/хв. При швидкоÑÑ‚Ñ– Ð¾Ñ…Ð¾Ð»Ð¾Ð´Ð¶ÐµÐ½Ð½Ñ 10 град/хв клітини практично не зневоднювалиÑÑ, що передбачало виÑоку ймовірніÑÑ‚ÑŒ внутрішньоклітинної криÑталізації. ДійÑно, Ñкщо життєздатніÑÑ‚ÑŒ МСК у ÑуÑпензії та ÐМС піÑÐ»Ñ ÐºÑ€Ñ–Ð¾ÐºÐ¾Ð½ÑÐµÑ€Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ Ð· 1 Ðœ ДМСО зі швидкоÑÑ‚Ñми Ð¾Ñ…Ð¾Ð»Ð¾Ð´Ð¶ÐµÐ½Ð½Ñ 0,5 та 1 град/хв Ñтановила не менше 75%, то кріоконÑÐµÑ€Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ Ð·Ñ– швидкоÑÑ‚Ñми Ð¾Ñ…Ð¾Ð»Ð¾Ð´Ð¶ÐµÐ½Ð½Ñ 10 та 20 град/хв призводило до загибелі близько 80% клітин. Теоретичний розрахунок Ñ– екÑпериментальні доÑÐ»Ñ–Ð´Ð¶ÐµÐ½Ð½Ñ Ð¿Ð¾ÐºÐ°Ð·Ð°Ð»Ð¸, що Ð´Ð»Ñ Ð´Ð¾ÑÑÐ³Ð½ÐµÐ½Ð½Ñ Ð²Ð¸Ñоких рівнів життєздатноÑÑ‚Ñ– кріоконÑÐµÑ€Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ ÐœÐ¡Ðš у Ñкладі ÐМС необхідно здійÑнювати з більш низькими швидкоÑÑ‚Ñми охолодженнÑ, ніж клітин у ÑуÑпензії.

Біографії авторів

Dmitriy N. Tarusin, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріобіохімії

Vitaliy A. Kireyev, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ низькотемпературного конÑервуваннÑ

Svetlana Ye. Kovalenko, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ низькотемпературного конÑервуваннÑ

Igor F. Kovalenko, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ низькотемпературного конÑервуваннÑ

Leonid F. Rozanov, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ низькотемпературного конÑервуваннÑ

Aleksandr Yu. Petrenko, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріобіохімії

Посилання

Bezugly N.D., Ostashko F.I., Volkova E.G. et al. Volumetry as a method for studying the permeability of the egg and mammalian embryos membrane. Nauchn.-Tekhn. Bull. NIIZH L and P of the Ukrainian SSR 1986; 34: 25–34.

Blandino A., Macias M., Cantero D. Formation of calcium alginate gel capsules: Influence of sodium alginate and CaCl2 concentration on gelation kinetics. J Biosci Bioeng. 1999; 88(6): 686–689. CrossRef

Chang T.M. Semipermeable microcapsules. Science 2014; 146(3643): 524–525. CrossRef

Chernobai N.A., Pakhomov A.V., Kovalenko I.F. et al. Temperature dependence of testes intersticium cell membrane permeability for cryoprotectant molecules. Problems of Cryobiology 2010; 20(2): 153–158.

Covas D.T., Panepucci R.A., Fontes A.M. et al. Multipotent mesenchymal stromal cells obtained from diverse human tissues share functional properties and gene-expression profile with CD146+ perivascular cells and fibroblasts. Exp Hematol 2008; 36(5): 642–654. CrossRef PubMed

Dandoy P., Meunier C.F., Leroux G. et al. A hybrid assembly by encapsulation of human cells within mineralised beads for cell therapy. PLoS One 2013; 8(1): 1–8. CrossRef PubMed

de Vos P., Faas M.M., Strand B. et al. Alginate-based microcapsules for immunoisolation of pancreatic islets. Biomaterials 2006; 27(32): 5603–5617. CrossRef PubMed

Gharravi A.M., Orazizadeh M., Ansari-Asl K. et al. Design and fabrication of anatomical bioreactor systems containing alginate scaffolds for cartilage tissue engineering. Avicenna J Med Biotechnol. 2012; 4(2): 65–74. PubMed

Gordienko E.A., Pushkar N.S. Physical grounds of low temperature preservation of cellular suspensions. Kiev: Nauk. Dumka 1994.

Gryshkov O., Pogozhykh D., Hofmann N. et al. Encapsulating non-human primate multipotent stromal cells in alginate via high voltage for cell-based therapies and cryopreservation. PLoS One 2014; 9(9): 1–12. CrossRef PubMed

Gryshkov O., Pogozhykh D., Zernetsch H. et al. Process engi-neering of high voltage alginate encapsulation of mesenchymal stem cells. Mater Sci Eng C Mater Biol Appl. 2014; 36: 77–83. CrossRef PubMed

Hunt N.C., Shelton R.M., Grover L.M. Reversible mitotic and meta-bolic inhibition following the encapsulation of fibroblasts in alginate hydrogels. Biomaterials 2009; 30(32): 6435–6443. CrossRef PubMed

Lim F., Sun A. Microencapsulated islets as bioartificial endocrine pancreas. Science 1980; 210(4472): 908–910. CrossRef

Machluf M., Orsola A., Boorjian S. et al. Microencapsulation of Leydig cells: a system for testosterone supplementation. Endocrinology 2003; 144(11): 4975–4979. CrossRef PubMed

Morch Y.A., Donati I., Strand B.L. et al. Effect of Ca2+, Ba2+, and Sr2+ on alginate microbeads. Biomacromolecules 2006; 7(5): 1471–1480. CrossRef PubMed

Moshaverinia A., Ansari S., Chen C. et al. Co-encapsulation of anti-BMP2 monoclonal antibody and mesenchymal stem cells in alginate microspheres for bone tissue engineering. Biomaterials 2013; 34(28): 6572–6579. CrossRef PubMed

Nolan J.S., Packer L. Monolayer culture techniques for normal human diploid fibroblasts. Methods Enzymol. 1974; 32: 561–568. CrossRef

Paynter S.J., Fuller B.J., Shaw R.W. Temperature dependence of mature mouse oocyte membrane permeabilities in the presence of cryoprotectant. Cryobiology 1997; 34(2): 122–130. CrossRef PubMed

Petrenko A.Yu., Mazur S.P., Petrenko Yu.A. et al. Isolation and multilineage differentiation of stromal cells from human fetal and adult tissue. Transplantologiya 2007; 9(1): 218–220.

Petrenko Yu.A., Skorobogatova N.G., Volkova N.A. et al. Characteristics of immunophenotype and differentiation potential of human mesenchymal bone marrow stromal cells after cryopreservation. Problems of Cryobiology 2010; 20(4): 436–442.

Petrenko Yu.A., Skorobogatova N.G., Volkova N.A. et al. Characteristics of immunophenotype and differentiation potential of human mesenchymal bone marrow stromal cells after cryopreservation. Problems of Cryobiology 2010; 20(4): 436–442.

Petty R.D., Sutherland L.A., Hunter E. M. et al. Comparison of MTT and ATP-based assays for the measurement of viable cell number. J Biolumin Chemilumin. 1995; 10(1): 29–34. CrossRef PubMed

Seglen P.O. Preparation of isolated rat liver cells. Meth. Cell. Biol. 1976; 13: 29–43. CrossRef

Sun J., Tan H. Alginate-based biomaterials for regenerative medi-cine applications. Materials 2013; 6(4): 1285–1309. CrossRef

Tarasov A.I., Petrenko A.Yu., Jones D.R.E. Osmotic characteristics of hematopoietic progenitor cells of human embryonic liver. Bulletin of Kharkiv National University No. 568: Biofizychnyy Visnyk 2002; 11(2): 58–62.

Todrin A.F., Popivnenko L.I., Kovalenko S.Ye. Thermophysical properties of cryoprotectants. I. Temperature and heat of melting. Problems of Cryobiology 2009; 19(2): 163–176.

Trufanova N.A., Petrenko Yu.A., Petrenko A.Yu. Effect of cryopreservation on viability, immunophenotype and differentiation properties of mesenchymal stromal cells of early organogenetic stage. Problems of Cryobiology 2010; 20(2): 135–144.

Velings N.M., Mestdagh M.M. Physico-chemical properties of alginate gel beads. Polym Gels Networks 1995; 3(3): 311–330. CrossRef

Volkova N.A., Mazur S.P., Kholodnyy V.S. et al. Skin stem cells as an object for cryopreservation. 1. Skin stem reserve. Probl Cryobiol Cryomed 2014; 24(1): 3–15. CrossRef

Downloads

Опубліковано

2016-06-23

Як цитувати

Tarusin, D. N., Kireyev, V. A., Kovalenko, S. Y., Kovalenko, I. F., Rozanov, L. F., & Petrenko, A. Y. (2016). Выбор условий криоконсервирования мезенхимальных стромальных клеток в суспензии и альгинатных микросферах на основе изучения их осмотических реакций в растворе 1 Ðœ ДМСО. Проблеми кріобіології і кріомедицини, 26(2), 133–144. https://doi.org/10.15407/cryo26.02.133

Номер

Розділ

Теоретична та експериментальна кріобіологія