Краниоцеребральная гипотермия стимулирует реакции ограниченного протеолиза в тканях крыс

Автор(и)

  • Viktoriya V. Lomako Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків
  • Aleksandr V. Shylo Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків
  • Georgiy A. Babijchuk Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків
  • Lyubov M. Samokhina ДУ «Національний інститут терапії імені Л. Т. Малої НАМН України, м. Харків»

DOI:

https://doi.org/10.15407/cryo26.03.238

Ключові слова:

краніоцеребральна гіпотермія, загальна протеолітична активність, нетрипсиноподібні протеїнази, a-1 інгібітор протеїназ, a-2-макроглобулін, щури

Анотація

Вивчали вплив помірного режиму краніоцеребральної гіпотермії (КЦГ) 32°С на загальну протеолітичну активніÑÑ‚ÑŒ (ЗПÐ), активніÑÑ‚ÑŒ нетрипÑиноподібних протеїназ (ÐТПП), а також Ñ—Ñ… інгібіторів (a-1-інгібітора протеїназ (a-1-ІП) Ñ– a‑2‑макроглобуліну (a-2-МГ)) у тканинах центральної нервової ÑиÑтеми (кора мозку, гіпоталамуÑ, мозочок), периферичних органів (Ñерце, легені, печінка, нирки) та Ñироватці крові щурів. Ð’Ñтановлено, що при КЦГ у вÑÑ–Ñ… вивчених зразках різко підвищувалаÑÑ Ð—ÐŸÐ (на один-два порÑдки) Ñ– активніÑÑ‚ÑŒ ÐТПП (у рази). При цьому на тлі незмінного Ñ€Ñ–Ð²Ð½Ñ a-1-ІП динаміка активноÑÑ‚Ñ– a-2-МГ мала різноÑпрÑмований Ñ– тканиноÑпецифічний характер, підвищуючиÑÑŒ у Ñироватці крові, гіпоталамуÑÑ–, Ñерці, знижуючиÑÑŒ у мозочку Ñ– нирках, а в інших тканинах вона не змінювалаÑÑŒ. Через 24 години виÑокий рівень ЗПРзберігавÑÑ, активніÑÑ‚ÑŒ ÐТПП у більшоÑÑ‚Ñ– зразків поверталаÑÑ Ð´Ð¾ початкової, a-1-ІП – знижувалаÑÑ Ñ‚Ñ–Ð»ÑŒÐºÐ¸ в корі мозку та гіпоталамуÑÑ–, а a‑2‑МГ – у гіпоталамуÑÑ–, мозочку Ñ– нирках, підвищуючиÑÑŒ у Ñерці та печінці, в інших зразках ÑпоÑтерігавÑÑ Ð¿Ð¾Ñ‡Ð°Ñ‚ÐºÐ¾Ð²Ð¸Ð¹ рівень. Різка Ð°ÐºÑ‚Ð¸Ð²Ð°Ñ†Ñ–Ñ Ð¿Ñ€Ð¾Ñ‚ÐµÑ—Ð½Ð°Ð·, Ñка зберігаєтьÑÑ Ñ‡ÐµÑ€ÐµÐ· 24 години піÑÐ»Ñ Ð¿Ñ€Ð¾Ð²ÐµÐ´ÐµÐ½Ð½Ñ ÐšÐ¦Ð“, зÑув динамічної рівноваги між ензимами та інгібіторами можуть відображати значні перебудови в ÑиÑтемах організму, ÑпрÑмовані на реалізацію захиÑних Ñ– терапевтичних механізмів.

Біографії авторів

Viktoriya V. Lomako, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріофізіології

Aleksandr V. Shylo, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріофізіології

Georgiy A. Babijchuk, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріофізіології

Посилання

Alva N., Palomeque J., Carbonell T. Deep hypothermia protects against acute hypoxia in vivo in rats: a mechanism related to the attenuation of oxidative stress. Exp Physiol 2013; 98(6): 1115–1124. CrossRef PubMed

Alva N., Palomeque J., Carbonell T. Oxidative stress and antioxidant activity in hypothermia and rewarming: can RONS modulate the beneficial effects of therapeutic hypothermia? Oxidative Medicine and Cellular Longevity 2013; Article ID957054. CrossRef

Andryuschenko P.I. Subject of studying of cellular transplantology: metalloproteinases. Transplantologiya 2005; 8(1): 38–45.

Babijchuk G.A., Marchenko V.S., Lomakin I.I., Belostotskiy A.V. Neurophysiological processes of cooled brain. Kiev: Naukova dumka; 1992.

Garkavi L.Kh., Kvakina E.B., Ukolova M.A. Adaptive reactions and resistance of the organism. Rostov-on-Don; 1990. PubMed

Gasparetti A. L., de Souza C.T., Pereira-da-Silva M. et al. Cold exposure induces tissue-specific modulation of the insulin-signalling pathway in Rattus norvegicus. J Physiol 2003; 552(1): 149–162. CrossRef PubMed

Girotti M., Donegan J.J., Morilak D.A. Chronic intermittent cold stress sensitizes neuroimmune reactivity in the rat brain. Psychoneuroendocrinology 2011; 36(8): 1164–1174. CrossRef PubMed

Han H.S., Park J., Kim J.-H., Suk K. Molecular and cellular pathways as a target of therapeutic hypothermia: pharmacological aspect. Cur Neuropharmacol 2012; 10(1): 80–87. CrossRef PubMed

Kalenova I.E., Sharinova I.A., Shevelev O.A., Butrov A.V. An experience of clinical application of hypothermia in ischemic stroke treatment. Nevrologia, Neuropsikhiatria, Psikhosomatika 2012; (2): 41–44.

Kees H., Polderman M.D. Therapeutic hypothermia and cont-rolled normothermia in the intensive care unit: Practical consi-derations, side effects, and cooling methods. Crit Care Med 2009; 37(3): 1101–1120. CrossRef PubMed

Laborit H., Huguenard P., Collectif P. Pratigue de l`hiber-notherapie en chirurgie et en medecine. Editions Masson&Cie; 1956.

Lees M., Taylor D.J., Wooley D.E. Mast cell proteinases activate precursor forms of collagenase and stromelysin, but not of gelatinases A and B. Eur J Biochem 1994; 223(1): 171–177. CrossRef PubMed

Lomakin I.I., Kudokotseva O.V., Purysheva V.Yu. Therapeutic effect of cord blood preparation at an example of dermal structural changes under experimental hypothyreosis and its potentiation by aerocryotherapy. In: Panchenko O.A., editor. Cryotherapy: safe technology of application. Kiev: CPIC; 2012; 51–59.

Lomakin I.I., Shylo O.V., Kozlov O.V. et al. Potentiation of tissue therapy effect in the model of pathological aging of the brain in animals. Transplantologia 2000; 1(1): 270–271.

Lomako V.V., Samokhina L.M. Effect of rhythmic cooling on some ethological and biochemical indices in rats with experi-mental depression. Problems of Cryobiology 2011; 21(1): 22–33.

Lomako V.V., Shilo A.V., Lomako S.V., Babijchuk G.A. Etho-logical analysis of the combined application of cold and cell therapy in rats with reserpine model of depression. Problems of Cryobiology 2005: 15 (3): 471–472.

Lomako V.V., Shilo A.V., Lomako S.V., Babiychuk G.A. Cold influence and cord blood restore pattern of behavioral activity in stressed rats. Veterynarna medytsyna 2008; 89: 232–237.

Lyden P.D., Krieger D., Yenari M. et al. Therapeutic hypothermia for acute store. Int J Stroke 2006; 1(1): 9–19. CrossRef PubMed

Marchenko V.S., Babijchuk G.A., Lomako V.V. et al. General approach to the problem of increasing the permeability of hematoencephalic barrier and body cold resistance. Problems of Cryobiology 1994; (1): 24–32.

Meshalkin E.N., editor. Clinical physiology of artificial hypothermia. Novosibirsk: Nauka, 1997.

Samokhina L.M., Dubinin A.A., inventors. A method for deter-mining the activity of proteainses or their inhibitors in biological fluids. Patent of Ukraine Nr.20171, IPC C 12 Q 1/38. 1997 Dec. 25.

Samokhina L.M., Starodub N.F., Babijchuk G.A., Lomako V.V. Rhythmic cold effect on activity of elastases in female rats with alcohol-depended hypertension. Problems of Cryobiology 2012; 22(1): 49–60.

Savel'eva G.M., Shalina R.I., Smirnova A.A. et al. Asphyxia of full-term newborns. Complex therapy with the use of cranio-cerebral hypothermia. Akusherstvo i Ginekologiya 2015; (4): 19–24.

Shankaran S. Hypoxic-ischemic encephalopathy and novel strategies for neuroprotection. Clin Perinatol 2012; 39(4): 919–929. CrossRef PubMed

Turk E.E. Hypothermia. Forensic Sci Med Pathol 2010; 6(2): 106–115. CrossRef PubMed

Tu-Sekine B., Raben D.M. Dual regulation of diacylglycerol kinase (DGK). Polybasic proteins promote activation by phospholipids and increase substrate affinity. J Biol Chem 2012; 287(50): 41619–41627. CrossRef PubMed

Veremeyenko K.N., Goloborod`ko O.P., Kizim A.I. Proteolysis in norm and pathology. Kiev: Zdorovya; 1988.

Wang X., Che H., Zhang W. et al. Effects of mild chronic intermittent cold exposure on rat organs. Int J Biol Sci 2015; 11(10): 1171–1180. CrossRef PubMed

Xing J.-Q., Zhou Y., Chen J.-F. et al. Effect of cold adaptation on activities of relevant enzymes and antioxidant system in rats. Int J Clin Exp Med 2014; 7(11): 4232–4237. PubMed

Yenari M.A., Han H.S. Neuroprotective mechanisms of hypothermia in brain ischaemia. Neurosci 2012; 13(4): 267–278. CrossRef

Downloads

Опубліковано

2016-09-23

Як цитувати

Lomako, V. V., Shylo, A. V., Babijchuk, G. A., & Samokhina, L. M. (2016). Краниоцеребральная гипотермия стимулирует реакции ограниченного протеолиза в тканях крыс. Проблеми кріобіології і кріомедицини, 26(3), 238–248. https://doi.org/10.15407/cryo26.03.238

Номер

Розділ

Теоретична та експериментальна кріобіологія