Многократное введение криоконсервированных клеток фетальной печени стареющим крысам предупреждает возрастные изменения антиоксидантных систем и увеличивает продолжительность жизни

Авторы

  • Olga V. Ochenashko Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины, г. Харьков
  • Yuriy V. Nikitchenko Институт Биологии Харьковского национального университета им. Ð’.Н. Каразина, г. Харьков
  • Oleksandr Yu. Petrenko Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины, г. Харьков

DOI:

https://doi.org/10.15407/cryo29.03.221

Ключевые слова:

криоконсервированные клетки фетальной печени, многократное введение, крысы, старение, прооксидантно-антиокидантный потенциал, продолжительность жизни

Аннотация

Ð’ предÑтавленной работе иÑÑледовали возможноÑÑ‚ÑŒ Ð¿Ñ€Ð¸Ð¼ÐµÐ½ÐµÐ½Ð¸Ñ ÐºÑ€Ð¸Ð¾ÐºÐ¾Ð½Ñервированных клеток фетальной печени (кКФП) как геропротекторного ÑредÑтва, Ð¾Ñ†ÐµÐ½Ð¸Ð²Ð°Ñ Ð¸Ñ… влиÑние на проокÑидантно-антиокÑидантный баланÑ, физиологичеÑкие параметры и продолжительноÑÑ‚ÑŒ жизни Ñтареющих крыÑ. УÑтановлено, что многократное введение кКФП (каждые 3 меÑÑца) взроÑлым крыÑам (Ñ 13- до 22-меÑÑчного возраÑта), предупреждает Ð¸Ð·Ð¼ÐµÐ½ÐµÐ½Ð¸Ñ Ð¿Ñ€Ð¾Ð¾ÐºÑидантного-антиокÑидантного баланÑа печени и крови, которые формируютÑÑ Ñƒ Ñтарых животных к 25 меÑÑцам жизни. Ðналогичные многократные инъекции кКФП Ñтарым крыÑам (Ñ 23 меÑÑцев и до конца жизни) ÑпоÑобÑтвуют прироÑту маÑÑÑ‹ тела, препÑÑ‚Ñтвуют ухудшению ÑоÑтоÑÐ½Ð¸Ñ ÑˆÐµÑ€Ñтного покрова и увеличивают продолжительноÑÑ‚ÑŒ жизни на 100 дней. Результаты работы позволÑют  раÑÑматривать введение кКФП как перÑпективный поход Ð´Ð»Ñ ÐºÐ¾Ñ€Ñ€ÐµÐºÑ†Ð¸Ð¸ возраÑтных изменений, ÑвÑзанных Ñ Ñ€Ð°Ð·Ð²Ð¸Ñ‚Ð¸ÐµÐ¼ окÑидативного ÑтреÑÑа.

 

Биографии авторов

Olga V. Ochenashko, Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины, г. Харьков

Отдел криобиохимии

Oleksandr Yu. Petrenko, Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины, г. Харьков

Отдел криобиохимии

Библиографические ссылки

Asakawa T., Matsushita S. Coloring conditions of thiobarbituric acid test for detecting lipid hydroperoxides. Lipids. 1980; 15( 3): 137-140. CrossRef

Bauman DE, Brown RE, Davis CL. Pathways of fatty acid synthesis and reducing equivalent generation in mammary gland of rat, sow, and cow. Arch Biochem Biophys. 1970; 140(1):237-44. CrossRef

Beauchamp C, Fridovich I. Superoxide dismutase: improved assays and an assay applicable to acrylamide gels. Anal Biochem. 1971; 44(1):276-87. CrossRef

Carlberg I, Mannervik B. Glutathione reductase. Methods Enzymol. 1985; 113:484-90. CrossRef

Choksi KB, Papaconstantinou J. Age-related alterations in oxidatively damaged proteins of mouse heart mitochondrial electron transport chain complexes. Free Radic Biol Med. 2008; 44(10):1795-805. CrossRef

Dalle-Donne I, Rossi R, Giustarini D, et al. Protein carbonyl groups as biomarkers of oxidative stress. Clin Chim Acta. 2003;329(1-2):23-38. CrossRef

Dan Dunn J, Alvarez LA, Zhang X, Soldati T. Reactive oxygen species and mitochondria: A nexus of cellular homeostasis. Redox Biol. 2015; 6:472-85. CrossRef

Kayanoki Y, Fujii J, Suzuki K, Kawata S, et al. Suppression of antioxidative enzyme expression by transforming growth factor beta 1 in rat hepatocytes. J Biol Chem. 1994; 269(22):15488-92.

Kovalov GA, Cherkashina DV. Modulating the state of the pro-oxidant-antioxidant brain system with xenopreparations under experimental chronic alcohol poisoning. Cell Preserv Technol. 2008; 6(1): 108.

Kregel KC, Zhang HJ. An integrated view of oxidative stress in aging: basic mechanisms, functional effects, and pathological considerations. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 2007; 292(1): 18-36. CrossRef

Lebedinsky AS, Cherkashina DV, et al. Positive effects of cryopreserved adult or fetal liver cell transplants on hypercholesterolemia and hepatic antioxidant defences in cholesterol-fed rabbits. Cryobiology. 2007;55(1):72-9. CrossRef

Levine RL, Williams JA, Stadtman ER, Shacter E. Carbonyl assays for determination of oxidatively modified proteins. Methods Enzymol. 1994; 233: 346-57. CrossRef

Liu L, Rando TA. Manifestations and mechanisms of stem cell aging. J Cell Biol. 2011;193(2):257-66. CrossRef

Marklund S, Nordensson I, Bäck O. Normal CuZn superoxide dismutase, Mn superoxide dismutase, catalase and glutathione peroxidase in Werner's syndrome. J Gerontol. 1981;36(4):405-9. CrossRef

Miller G.L. Protein Determination of Large Numbers of Samples. Anal Chem. 1959, 31 (5): 964. CrossRef

Ochenashko OV, Nikitchenko YuV, Lebedyns'kyÄ­ OS, et al. [Antioxidant system activation in rats with experimental cirrhosis after injection of cryopreserved fetal liver cells]. Ukr Biokhim Zh. 2011;83(2):85-92. Ukrainian.

Ochenashko OV, Volkova NA, Mazur SP, et al. Cryopreserved fetal liver cell transplants support the chronic failing liver in rats with CCl4-induced cirrhosis. Cell Transplant. 2006; 15(1):23-33. CrossRef

Oh J, Lee YD, Wagers AJ. Stem cell aging: mechanisms, regulators and therapeutic opportunities. Nat Med. 2014; 20(8):870-80. CrossRef

Ohkawa H, Ohishi N, Yagi K. Assay for lipid peroxides in animal tissues by thiobarbituric acid reaction. Anal Biochem. 1979; 95(2):351-8. CrossRef

Paglia DE, Valentine WN. Studies on the quantitative and qualitative characterization of erythrocyte glutathione peroxidase. J Lab Clin Med. 1967;70(1):158-69.

Petrenko AYu, Sukach AN. Isolation of intact mitochondria and hepatocytes using vibration. Anal Biochem. 1991;194(2): 326-9. CrossRef

Petrenko YA, Jones DR, Petrenko AY. Cryopreservation of human fetal liver hematopoietic stem/progenitor cells using sucrose as an additive to the cryoprotective medium. Cryobiology. 2008;57(3):195-200. CrossRef

Platonov AE. Statistical analysis in medicine and biology: tasks, terminology, logic, computer methods. Moscow: Publishing house RAMS, 2000. 52 p.

Semeraro R, Cardinale V, Carpino G, et al. The fetal liver as cell source for the regenerative medicine of liver and pancreas. Ann Transl Med. [Internet]. 2013 [cited 2019 Jul 31]; 1(2):13. Available from: http://atm.amegroups.com/article/view/1187/1557.

Shen J, Tsai YT, Dimarco NM, et al. Transplantation of mesenchymal stem cells from young donors delays aging in mice. Sci Rep. [Internet]. 2011 [cited 2019 Jul 31]; 1:67. Available from: https://www.nature.com/articles/srep00067. CrossRef

Shih PH1, Yen GC. Differential expressions of antioxidant status in aging rats: the role of transcriptional factor Nrf2 and MAPK signaling pathway. Biogerontology. 2007;8(2):71-80. CrossRef

Shytle RD, Ehrhart J, Tan J, et al. Oxidative stress of neural, hematopoietic, and stem cells: protection by natural compounds. Rejuvenation Res. 2007;10(2):173-8. CrossRef

Skorobogatova N, Novikov AN, Fuller BJ, Petrenko AY. Importance of a three-stage cooling regime and induced ice nucleation during cryopreservation on colony-forming potential and differentiation in mesenchymal stem/progenitor cells from human fetal liver. Cryo Letters. 2010;31(5):371-9.

Tarasov AI, Petrenko AY, Jones DR. The osmotic characteristics of human fetal liver-derived hematopoietic stem cell candidates. Cryobiology. 2004;48(3):333-40. CrossRef

Tung BT, Rodriguez-Bies E, Thanh HN, et al. Organ and tissue-dependent effect of resveratrol and exercise on antioxidant defenses of old mice. Aging Clin Exp Res. 2015; 27(6):775-83. CrossRef

Usatenko MS, Tsoncheva AV. [The effect of insulin deficiency and hydrocortisone on the activity of NADP- and NAD- dependent malate dehydrogenase in rat liver and renal cortex]. Vopr Med Khim. 1974;20(4):401-6. Russian.

Younes M, Schlichting R, Siegers CP. Glutathione S-transferase activities in rat liver: effect of some factors influencing the metabolism of xenobiotics. Pharmacol Res Commun. 1980; 12(2):115-29. CrossRef

Xie C, Jin J, Lv X, et al. Anti-aging Effect of Transplanted Amniotic Membrane Mesenchymal Stem Cells in a Premature Aging Model of Bmi-1 Deficiency. Sci Rep. [Internet]. 2015 [cited 2019 Jul 31];5:13975. Available from: https://www.nature.com/articles/srep13975. CrossRef

Zaheer N, Tewari KK, Krishnan PS. Mitochondrial forms of glucose 6-phosphate dehydrogenase and 6-phosphogluconic acid dehydrogenase in rat liver. Arch Biochem Biophys. 1967;120(1):22-34. CrossRef

Zelewski M, Swierczyński J. Malic enzyme in human liver. Intracellular distribution, purifi cation and properties of cytosolic isozyme. Eur J Biochem. 1991; 201(2):339-45. CrossRef

Загрузки

Опубликован

2019-09-19

Как цитировать

Ochenashko, O. V., Nikitchenko, Y. V., & Petrenko, O. Y. (2019). Многократное введение криоконсервированных клеток фетальной печени стареющим крысам предупреждает возрастные изменения антиоксидантных систем и увеличивает продолжительность жизни. Проблемы криобиологии и криомедицины, 29(3), 221–236. https://doi.org/10.15407/cryo29.03.221

Выпуск

Том 29 № 3 (2019): Проблемы криобиологии и криомедицины

Раздел

Теоретическая и экспериментальная криобиология

Лицензия

Авторы, публикующие в данном журнале, соглашаются со следующим:

  • Авторы сохраняют за собой авторские права на работу и предоставляют журналу право первой публикации работы на условиях лицензии Creative Commons Attribution License, которая позволяет другим распространять данную работу с обязательным сохранением ссылок на авторов оригинальной работы и оригинальную публикацию в этом журнале.
  • Авторы сохраняют право заключать отдельные контрактные договоренности, касающиеся не-эксклюзивного распространения версии работы в опубликованном здесь виде (например, размещение ее в институтском хранилище, публикацию в книге), со ссылкой на ее оригинальную публикацию в этом журнале.
  • Авторы имеют право размещать их работу в сети Интернет (например в институтском хранилище или персональном сайте) до и во время процесса рассмотрения ее данным журналом, так как это может привести к продуктивному обсуждению и большему количеству ссылок на данную работу (См. The Effect of Open Access).