ВлиÑние раÑтворов криопротекторов на выживаемоÑÑ‚ÑŒ и тератогенноÑÑ‚ÑŒ Ñмбрионов караÑÑ (Carassius auratus gibelio Bloch, 1783)
DOI:
https://doi.org/10.15407/cryo24.02.149Ключевые слова:
Ñмбрионы, караÑÑŒ, криопротектор, выживаемоÑÑ‚ÑŒ, тератогенноÑÑ‚ÑŒАннотация
ИÑÑледовано влиÑние раÑтворов криопротекторов, принадлежащих к различным клаÑÑам химичеÑких вещеÑтв, на выживаемоÑÑ‚ÑŒ и аномальное развитие Ñмбрионов караÑÑ (Carassius auratus gibelio Bloch, 1783) на Ñтадии развитиÑ, ÑоответÑтвующей 6 Ñомитам. Ð’ течение 60 мин Ñмбрионы инкубировали в 10%-Ñ… раÑтворах криопротекторовдиметилÑульфокÑида (ДМСО), 1,2-пропандиола (1,2-ПД), 1,3-пропандиола (1,3-ПД), 1,3-бутандиола (1,3-БД), 1,4-бутандиола (1,4-БД), 1,2-метаокÑиÑтана (1,2-МОÐ), глицерина , ÑÑ‚Ð¸Ð»ÐµÐ½Ð³Ð»Ð¸ÐºÐ¾Ð»Ñ (ÐГ), метанола, полиÑтиленокÑида (ПÐО-1500) и Ñахарозы. ПоÑле Ñтого Ñмбрионы отмывали и проÑлеживали развитие до Ñтадии Ñвободно плавающей личинки. Ðаибольший уровень выживаемоÑти Ñмбрионов караÑÑ (54–67%) наблюдалÑÑ Ð² 10%-Ñ… раÑтворах 1,2-ПД, 1,3-ПД, ÐГ, ПÐО-1500, Ñахарозы, которые обеÑпечивали уровень ÑохранноÑти нормально развивающихÑÑ Ñмбрионов, близкий к контрольному. РаÑтворы криопротекторов 1,3-БД, 1,4-БД обладали большей токÑичноÑтью – уровень выживаемоÑти в них ÑоÑтавил 40–49%. Ð’ раÑтворах криопротекторов 1,2-МОÐ, ДМСО, глицерина и метанола уровень выживаемоÑти Ñмбрионов был минимальным.
Ðаибольший уровень тератогенных Ñмбрионов наблюдали поÑле Ð¸Ð½ÐºÑƒÐ±Ð¸Ñ€Ð¾Ð²Ð°Ð½Ð¸Ñ Ð² раÑтворах криопротекторов 1,2-МОРи метанола.
Библиографические ссылки
Adam M.M., Rana K.J., McAndrew B.J. Effect of cryoprotectants on activity of selected enzymes in fish embryos. Cryobiology 1995; 32(1): 92–104. CrossRef
Ahammad M.M., Bhattacharyya D., Banerjee R.D., Bandyopadhyay P.K. Toxicity of protectants to embryos of silver carp after cold storage at different storage time periods. Cell Preservation Technology 2004; 2(3): 227–233. CrossRef
Bart A.N. The use of ultrasound to enhance transport of compounds into fish and fish embryos: a review. Asian Fisheries Science 2001; 14(4): 389–397.
Bart A.N. New approaches in cryopreservation of fish embryos. In: The World Aquaculture Society: Cryopreservation in Aquatic Species. Louisiana, Baton Rouge 2000; p. 179–187.
Cabrita E., Chereguini O., Luna M.J. et al. Effect of different treatments on the chorion permeability to DMSO of turbot embryos (Scophthalmus maximus). Aquaculture 2003; 221(1–4): 593–604. CrossRef
Ding F.H., Xiao Z.Z., Li J. Preliminary studies on the vitrification of red sea bream (Pagrus major) embryos. Theriogenology 2007; 68(5): 702–708. CrossRef PubMed
Fahy G.M., Lilley T.H., Linsdell H. et al. Cryoprotectant toxicity and cryoprotectant toxicity reduction: In search of molecular mechanisms. Cryobiology 1990; 27(3): 247–268. CrossRef
Fahy G.M., Wowk B., Wu J., Paynter S. Improved vitrification solutions based on the predictability of vitrification solution toxicity. Cryobiology 2004; 48(1): 22–35. CrossRef PubMed
Gerasimov J.L. Fundamentals of Fisheries. Samara: Samara University; 2003.
Hagedorn M., Kleinhans F.W. Problems and prospects in cryopreservation of fish embryos. In: The World Aquaculture Society: Cryopreservation in Aquatic Species. Louisiana, Baton Rouge 2000; p. 161–178.
Hagedorn M., Kleinhans F.W., Artemov D., Pilatus U. Characte-rization of a major permeability barrier in the zebrafish embryo. Biol Reprod 1998; 59(5): 1240–1250. CrossRef PubMed
Hagedorn M., Hsu E.W., Kleinhans F.W., Wildt D.E. New approaches for studying permeability of fish embryos: Toward successful cryopreservation. Cryobiology 1997; 34(4): 335–347. CrossRef PubMed
Hagedorn M., Hsu E.W., Pilatus U. et al. Magnetic resonance microscopy and spectroscopy reveal kinetics of cryopro-tectant permeation in a multicompartment biological system. Proceedings Nat Acad Sci. USA; 1996; 93(15): 7454–7459. CrossRef
Leibo S.P. Cryopreservation of oocytes and embryos: Optimization by theoretical versus empirical analysis. Theriogenology 2008; 69(1): 37–47. CrossRef PubMed
Liu K.C., Chou T.C., Lin H.D. Cryosurvival of goldfish embryo after subzero freezing. Aquatic Living Resources 1993; 6(1): 63–66. CrossRef
Mikson K.B., Cherepanov V.V. Effect of cryoprotectant solutions on survival of crucian carp embryos. Problems of Cryobiology 2012; 22(3): 373.
Mikson K.B., Kopeika E.F., Ishkov G.S. Influence of cryoprotective medium components on the loach embryos (Misgurnus fossilis L., 1758). Interdepartmental thematic collection: Veterinary Medicine 2008; (89): 271–274.
Mikson K.B., Kopeika E.F., Linnik T.P. Conditions for loach (Misgurnus fossilis) embryos vitrification in cryoprotective media. Problems of Cryobiology 2009; 19(2): 154–162.
Mikson K.B., Kopeika E.F., Linnik T.P. Survival of Dwarf gouramy embryos (Colisa lalia) after incubation in cryoprotective media. Problems of Cryobiology 2008; 18(3): 343–345.
Mikson K.B., Zinchenko A.V., Bobrova E.N. Phase transitions and vitrification in cryoprotective media and embryos Misgurnus fossilis L., 1758. Problems of Cryobiology 2008; 18(2): 225.
Petrunkina A.M. Fundamental aspects of gamete cryobiology. J Reproduktionsmed Endokrinol 2007; 4(2): 78–91.
Robertson S.M., Lawrence A.L., Nell W.H. et al. Toxicity of the cryoprotectants glycerol, dimethyl sulfoxide, ethylene glycol, methanol, sucrose, and sea salt solutions to the embryos of red drum. Progressive Fish-Cult 1988; 50(3): 148–154. CrossRef
Veprintsev B.N., Novikov A.N., Uteshev V.K., Smolikhina T.I. DMSO effect at subzero temperatures on loach embryos. Kriobiologiya 1989; (2): 16–21.
Yamamoto K., Yamazaki F. Rhythm of development in the oocyte of the gold-fish, Carassius auratus. Bull Fac Fish Hokkaido Univ 1961; 12(2): 93–110.
Zhang T.T. Cryopreservation of gametes and embryos of aquatic species. In: Fuller B.J., Lane N., Benson E.E., editors. Life in the Frozen State. Florida: CRC Press LLC; 2004. p. 415–436. CrossRef
Zhang T.T., Rawson D.M. Permeability of dechorionated one–cell and six-somite stage zebrafish (Brachydanio rerio) embryos to water and methanol. Cryobiology 1998; 37(1): 13–21. CrossRef PubMed
Zhang T.T., Rawson D.M. Permeability of the vitelline membrane of zebrafish (Brachydanio rerio) embryos to methanol and propane-1,2-diol. CryoLetters 1996; 17(6): 273–280.
Загрузки
Опубликован
Как цитировать
Выпуск
Раздел
Лицензия
Copyright (c) 2020 Konstantin B. Mikson, Elena B. Revenko, Anna A. Gapon
Это произведение доступно по лицензии Creative Commons «Attribution» («Атрибуция») 4.0 Всемирная.
Авторы, публикующие в данном журнале, соглашаются со следующим:
- Авторы сохраняют за собой авторские права на работу и предоставляют журналу право первой публикации работы на условиях лицензии Creative Commons Attribution License, которая позволяет другим распространять данную работу с обязательным сохранением ссылок на авторов оригинальной работы и оригинальную публикацию в этом журнале.
- Авторы сохраняют право заключать отдельные контрактные договоренности, касающиеся не-эксклюзивного распространения версии работы в опубликованном здесь виде (например, размещение ее в институтском хранилище, публикацию в книге), со ссылкой на ее оригинальную публикацию в этом журнале.
- Авторы имеют право размещать их работу в сети Интернет (например в институтском хранилище или персональном сайте) до и во время процесса рассмотрения ее данным журналом, так как это может привести к продуктивному обсуждению и большему количеству ссылок на данную работу (См. The Effect of Open Access).