Криочувствительность мезенхимальных стромальных клеток, криоконсервированных в составе носителей на основе скелетов морских губок Ianthella basta

Авторы

  • Vitaliy V. Mutsenko Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины, г. Харьков
  • Olena Yu. Rogulska Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины, г. Харьков
  • Yuriy A. Petrenko Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины, г. Харьков
  • Hermann Ehrlich Институт экспериментальной физики, Фрайбергский технический университет, г. Фрайберг
  • Svetlana P. Mazur Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины, г. Харьков
  • Natalya A. Volkova Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины, г. Харьков
  • Aleksandr Yu. Petrenko Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины, г. Харьков

DOI:

https://doi.org/10.15407/cryo26.01.013

Ключевые слова:

хитин, морские губки, адгезивные клетки, суспензия клеток, тканеинженерные конструкции, мезенхимальные стромальные клетки, криоконсервирование

Аннотация

Ð’ работе предÑтавлены результаты ÑкÑпериментальных иÑÑледований по иÑпользованию Ñкелетов морÑкой губки Ianthella basta в качеÑтве ноÑителей Ð´Ð»Ñ Ð¼ÐµÐ·ÐµÐ½Ñ…Ð¸Ð¼Ð°Ð»ÑŒÐ½Ñ‹Ñ… Ñтромальных клеток человека (МСК), их биоÑовмеÑтимоÑти Ñ Ð´Ð°Ð½Ð½Ñ‹Ð¼Ð¸ клетками, а также оценка чувÑтвительноÑти клеток, раÑтущих в ÑоÑтаве Ñтих ноÑителей, к криоконÑервированию под защитой 10% ДМСО и 20% фетальной Ñыворотки крупного рогатого Ñкота по методу, разработанному Ð´Ð»Ñ ÑуÑпензии МСК (медленное охлаждение Ñо ÑкороÑтью 1 град/мин, быÑтрый отогрев при 37°С). С помощью киÑлотно-щелочного гидролиза из Ñкелетов морÑкой губки Ianthella basta были получены Ñетчатые ноÑители, ÑоÑтоÑщие из хитиновых фибрилл. Ð’ ходе ÐºÑƒÐ»ÑŒÑ‚Ð¸Ð²Ð¸Ñ€Ð¾Ð²Ð°Ð½Ð¸Ñ in vitro данные ноÑители обеÑпечивали адгезию, миграцию и пролиферацию МСК. ПоÑле криоконÑервирова-Ð½Ð¸Ñ Ð½Ð°Ð±Ð»ÑŽÐ´Ð°Ð»Ð¾ÑÑŒ значительное Ñнижение жизнеÑпоÑобноÑти клеток, при Ñтом их метаболичеÑÐºÐ°Ñ Ð°ÐºÑ‚Ð¸Ð²Ð½Ð¾ÑÑ‚ÑŒ ÑоÑтавлÑла (46,8 ± 5,8)% по отношению к нативным образцам и не уменьшалаÑÑŒ на первые Ñутки рекультивированиÑ. Из полученных результатов Ñледует, что Ñкелеты морÑкой губки Ianthella basta предÑтавлÑÑŽÑ‚ Ñобой новый перÑпективный иÑточник ноÑи-телей Ð´Ð»Ñ Ð¸ÑÐ¿Ð¾Ð»ÑŒÐ·Ð¾Ð²Ð°Ð½Ð¸Ñ Ð² тканевой инженерии и регенеративной медицине. Ð”Ð°Ð½Ð½Ð°Ñ Ñ€Ð°Ð±Ð¾Ñ‚Ð° может поÑлужить оÑÐ½Ð¾Ð²Ð¾Ð¹Â Ð´Ð»Ñ Ð´Ð°Ð»ÑŒÐ½ÐµÐ¹ÑˆÐµÐ¹ разработки методов криоконÑÐµÑ€Ð²Ð¸Ñ€Ð¾Ð²Ð°Ð½Ð¸Ñ Ñтволовых клеток в ÑоÑтаве трехмерных тканеинженерных конÑтрукций.

Биографии авторов

Vitaliy V. Mutsenko, Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины, г. Харьков

Отдел криобиохимии

Olena Yu. Rogulska, Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины, г. Харьков

Отдел криобиохимии

Yuriy A. Petrenko, Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины, г. Харьков

Отдел криобиохимии

Hermann Ehrlich, Институт экспериментальной физики, Фрайбергский технический университет, г. Фрайберг

Отдел биоминералогии и ÑкÑтремальной биомиметики

Svetlana P. Mazur, Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины, г. Харьков

Отдел криобиохимии

Natalya A. Volkova, Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины, г. Харьков

Отдел криобиохимии

Aleksandr Yu. Petrenko, Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины, г. Харьков

Отдел криобиохимии

Библиографические ссылки

Acker J.P., Larese A., Yang H. et al. Intracellular ice formation is affected by cell interactions. Cryobiology 1999; 38(4): 363–371. CrossRef PubMed

Armitage W., Juss B. Freezing monolayers of cells without gap junctions. Cryobiology 2003; 46(2): 194–196. CrossRef

Belous A.M., Grischenko V.I. Cryobiology. Kyiv: Naukova dumka; 1994.

Brunner E., Ehrlich H., Schup P. et al. Chitin-based scaffolds are an integral part of the skeleton of the marine demosponge Ianthella basta. J Struct Biol 2009; 168(3): 539–547. CrossRef PubMed

Custodio M.R., Lobo-Hajdu G., Hajdu E., Muricy G., editors. Porifera research: biodiversity, innovation & sustainability. Rio de Janeiro, Museu Nacional; 2007.

Ehrlich H., Ilan M., Maldonado M. Three-dimensional chitin-based scaffolds from Verongida sponges (Demospongiae: Porifera). Part I. Isolation and identification of chitin. Int J Biol Macromol 2010; 47(2): 132–140. CrossRef PubMed

Ehrlich H., Krautter M., Hanke T. et al. First evidence of the presence of chitin in skeletons of marine sponges. Part II. Glass sponges (Hexactinellida: Porifera). J Exp Zool Mol Dev Evol 2007; 308B(4): 473–483. CrossRef PubMed

Ehrlich H., Maldonado M., Spindler K. et al. First evidence of chitin as a component of the skeletal fibers of marine sponges. Part I. Verongidae (demospongia: Porifera). J Exp Zool Mol Dev Evol 2007; 308B(4): 347–356. CrossRef PubMed

Hunt C.J. Cryopreservation of human stem cells for clinical application: a review. Transfus Med Hemotherapy 2011; 38(2): 107–123. CrossRef PubMed

Katsen-Globa A., Meiser I., Petrenko Yu. et al. Towards ready-to-use 3-D scaffolds for regenerative medicine: adhesion-based cryopreservation of human mesenchymal stem cells attached and spread within alginate-gelatin cryogel scaffolds. J Mater Sci Mater Med 2014; 25(3): 857–871. CrossRef PubMed

Khor E. Chitin: Fulfilling a biomaterials promise. Elsevier Science; 2001.

Liu B.L., McGrath J. Freezing osteoblast cells attached to hydroxyapatite discs and glass coverslips: Mechanisms of damage. Sci China Ser E Technol Sci 2007; 50(2): 248–256. CrossRef

Liu B.L., McGrath J., McCabe L. et al. Cellular response of murine osteoblasts to cryopreservation: the influence of attachment to hydroxyapatite (HA) scaffolds. African Journal of Biotechnology 2014; 5(21): 2014–2019.

Liu K., Yang Y., Mansbridge J. Comparison of the stress response to cryopreservation in monolayer and three-dimensional human fibroblast cultures: stress proteins, MAP kinases, and growth factor gene expression. Tissue Eng 2000; 6(5): 539–554. CrossRef PubMed

Malpique R., Ehrhart F., Katsen-Globa A. et al. Cryopreservation of adherent cells: strategies to improve cell viability and function after thawing. Tissue Eng Part C Methods 2009; 15(3): 373–386. CrossRef PubMed

Mazur P., Leibo S.P., Chu E.H. A two-factor hypothesis of freezing injury. Evidence from Chinese hamster tissue-culture cells. Exp Cell Res 1972; 71(2): 345–355. CrossRef

Petrenko Yu.A., Rogulska O.Yu., Mutsenko V.V. et al. A sugar pretreatment as a new approach to the Me2SO- and xeno-free cryopreservation of human mesenchymal stromal cells. CryoLetters 2014; 35(3): 239–246.

Wan A.C., Tai B.C. Chitin – a promising biomaterial for tissue engineering and stem cell technologies. Biotechnol Adv 2013; 31(8): 1776–1785. CrossRef PubMed

Xu X., Liu Y., Cui Z.F. Effects of cryopreservation on human mesenchymal stem cells attached to different substrates. J Tissue Eng Regen Med 2014; 8(8): 664–672. CrossRef PubMed

Загрузки

Опубликован

2016-03-21

Как цитировать

Mutsenko, V. V., Rogulska, O. Y., Petrenko, Y. A., Ehrlich, H., Mazur, S. P., Volkova, N. A., & Petrenko, A. Y. (2016). Криочувствительность мезенхимальных стромальных клеток, криоконсервированных в составе носителей на основе скелетов морских губок Ianthella basta. Проблемы криобиологии и криомедицины, 26(1), 13–23. https://doi.org/10.15407/cryo26.01.013

Выпуск

Раздел

Теоретическая и экспериментальная криобиология