Температурні показники після кріовпливу, потенційованого дистильованою водою, на експериментальній моделі печінки свині за умов відсутності спланхнічного кровотоку

Автор(и)

  • Oleksiy I. Dronov Кафедра загальної хірургії â„–1, м. Київ, Україна
  • Dmytro I. Khomenko Кафедра загальної хірургії â„–1, м. Київ, Україна
  • Petro P. Bakunets V.S. Zemskov Kiev City Center of Surgery for Liver, Pancreas and Biliary Tract Diseases, Kyiv
  • Viktoria V. Teteryna Кафедра загальної хірургії â„–1, м. Київ, Україна

DOI:

https://doi.org/10.15407/cryo27.04.348

Ключові слова:

кріодеструкція, локальний кріовплив, посилення кріодеструкції, дистильована вода, термопара

Анотація

ЕфективніÑÑ‚ÑŒ локального кріовпливу на патологічну ділÑнку тканини залежить від значень доÑÑгнутої температури на конкретній глибині. У даному доÑлідженні предÑтавлено результати порівнÑльного аналізу динаміки змін температури за показниками комплекÑу вимірювального інтраопераційного термопарного чотириканального «КВІТ–4» на диÑкретних глибинах 3, 8, 13 та18 мм. Ðа екÑпериментальній моделі печінки Ñвині за умов відÑутноÑÑ‚Ñ– Ñпланхнічного кровотоку нами проведено два поÑлідовні цикли локальної кріодії з попереднім введеннÑм у паренхіму печінки Ñвині диÑтильованої води (оÑновна група) та без Ð²Ð²ÐµÐ´ÐµÐ½Ð½Ñ (контрольна група). Ð¡ÐµÑ€ÐµÐ´Ð½Ñ Ñ‚ÐµÐ¼Ð¿ÐµÑ€Ð°Ñ‚ÑƒÑ€Ð° у тканині печінки тварин оÑновної групи на глибині3 ммвід робочої поверхні кріоаплікатора наприкінці 10–ої хвилини другого циклу кріовпливу була на 36 градуÑів нижча, ніж у контрольній (–85,2 та –49,2°С відповідно); на глибині8 мм– нижча на 52,5 градуÑи (–61,1 та –8,5°С відповідно); на глибині13 мм– нижча на 51,5 Ð³Ñ€Ð°Ð´ÑƒÑ (–59,5 та –3,0°С відповідно), на глибині18 мм– нижча на 40,4 градуÑів (–40,5 та –0,1°С відповідно). Ð’Ð²ÐµÐ´ÐµÐ½Ð½Ñ Ð´Ð¸Ñтильованої води в біологічну тканину за 5 хв до початку локального кріовпливу поÑилювало його ефективніÑÑ‚ÑŒ, про що Ñвідчило доÑÑÐ³Ð½ÐµÐ½Ð½Ñ Ð±Ñ–Ð»ÑŒÑˆ низьких температур у найбільш віддалених від робочої поверхні кріоаплікатора ділÑнках.

Біографії авторів

Oleksiy I. Dronov, Кафедра загальної хірургії №1, м. Київ, Україна

Ðаціональний медичний універÑитет імені О.О. БогомольцÑ

Dmytro I. Khomenko, Кафедра загальної хірургії №1, м. Київ, Україна

Ðаціональний медичний універÑитет імені О.О. БогомольцÑ

Petro P. Bakunets, V.S. Zemskov Kiev City Center of Surgery for Liver, Pancreas and Biliary Tract Diseases, Kyiv

КиївÑький міÑький центр хірургії захворювань печінки, підшлункової залози та жовчних шлÑхів ім. Ð’.С. ЗемÑкова, м. Київ, Україна

Viktoria V. Teteryna, Кафедра загальної хірургії №1, м. Київ, Україна

Ðаціональний медичний універÑитет імені О.О. БогомольцÑ

Посилання

Cooper I.S., Lee A. Cryostatic congelation: a system for producing a limited controlled region of cooling or freezing of biologic tissues. J Nerv Ment Dis 1961; 133(3): 259–263. CrossRef

Degtev M.V., Kozhevnikov E.V., Kozhevnikov V.A. The method of warts and hemangiomas cryodestruction using sodium etamzylate. Vestnik Dermatologiii Venerologii 2011; (1): 69–72.

Chzhao A.V., Chekmareva I.A., Paklin O.V. et al. Early morphological changes of hepatocytes after cryodestruction. Journal of Anatomy and Histopathology 2017; 6(1): 109–114. CrossRef

Gage A.A., Baust J. Mechanism of tissue injury in cryosurgery. Cryobiology 1998; 37(3): 171–186. CrossRef PubMed

Goltsev A.N., Diabina O.A., Ostankov M.V. et al. Cancer stem cells in tumor pathogenesis after cryoablation. Probl Сryobiol Сryomed 2015; 25(3): 205–218. CrossRef

Khomenko D.I., Lukyanova N.Yu., Kozachuk E.S. Study results of local cryosurgery in experimental models of 36% NaCl, distilled H2O and 0,9% NaCl and prospects of their use during cryofixation of pancreas solid tumors. Advancements in Clinical and Experimental Medicine: Proc. of Scientific Conference Devoted to the 60th Anniversary of I. Horbachevsky Ternopil State Medical University; 2017 June 14; Ternopil: TSMU; 2017: 182–184.

Khomenko D.I., Lukyanova N.Yu., Onoshko M.M., Kozachuk E.S. Study results of morphological changes of Guerin carcinoma cells depending on the exposure time in distilled H2O solution. Proc. of Scientific Conference of Young Scientists devoted to the 40th Anniversary of Shupyk National Medical Academy of Postgraduate Education; 2017 May 18; Kyiv; 2017: 91–93.

Kubyshkin V.A., Ionkin D.A., Kungurtsev S.V., Chzhao A.V. History of cryosurgery. Khirurgiya. Zhurnal im N.I. Pirogova 2015; (5): 62–74.

Shafranov V.V., Borkhunova E.N., Kostylev M.A. et al. The mechanism of destruction of biological tissue at a local cryodestruction. Vestnyk Rossiyskoy Akademii Estestvennykh Nauk 2012; (1): 68–77.

Shafranov V.V., Borhunova E.N., Taganov A.V. et al. Modern treatment technologies of large angiomas with critical localization in children. Al'manah Kliniceskoj Mediciny 2008; 17(2): 287–288.

Shafranov V.V., Ten Yu.V., Reznitsky V.I. et al. UHF and cryoeffect on biological tissues in experiment and clinics. Cryobiology 1988; (3): 38–42.

State Pharmacopoeia of Ukraine / 2nd ed. – Kharkiv: State Enterprise 'Ukrainian Scientific Pharmacopoeial Center for Quality of Medicinal Products'; 2014; 2: 724 p.

Tabolinovskaya T.D. Pustynsky I.N. Analysis of the efficiency of cryogenic treatment for tongue cancer. Head and Neck Tumors 2014; (1): 15–23.

Yu Q., Yi G., Zhao G., Zhang Y. Effect of vascular network and nanoparticles on heat transfer and intracellular ice formation in tumor tissues during cryosurgery. CryoLetters 2014; 35(2): 95–100.

Downloads

Опубліковано

2017-12-23

Як цитувати

Dronov, O. I., Khomenko, D. I., Bakunets, P. P., & Teteryna, V. V. (2017). Температурні показники після кріовпливу, потенційованого дистильованою водою, на експериментальній моделі печінки свині за умов відсутності спланхнічного кровотоку. Проблеми кріобіології і кріомедицини, 27(4), 348–355. https://doi.org/10.15407/cryo27.04.348

Номер

Розділ

Кріомедицина, клінічна та експериментальна трансплантологія