Вплив умов кріоконсервування на фенотиповий профіль та імуномодулююча активність клітин фетальної печінки

Автор(и)

  • Maksim V. Ostankov Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків
  • Larisa A. Leonova Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків
  • Nikolay A. Bondarovich Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків
  • Lyudmila V. Ostankova Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків
  • Anatolyi M. Goltsev Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків

DOI:

https://doi.org/10.15407/cryo29.03.266

Ключові слова:

кріоконсервування, ДМСО, клітини фетальної печінки щура, імуномодулююча активність, атопічний дерматит

Анотація

ДоÑліджено вплив умов кріоконÑÐµÑ€Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ (ÐºÐ¾Ð½Ñ†ÐµÐ½Ñ‚Ñ€Ð°Ñ†Ñ–Ñ ÐºÑ€Ñ–Ð¾Ð¿Ñ€Ð¾Ñ‚ÐµÐºÑ‚Ð¾Ñ€Ñƒ диметилÑульфокÑиду − ДМСО, швидкіÑÑ‚ÑŒ Ð¾Ñ…Ð¾Ð»Ð¾Ð´Ð¶ÐµÐ½Ð½Ñ Ð² різних температурних інтервалах) на фенотипічний профіль та імуномодулюючу активніÑÑ‚ÑŒ клітин фетальної печінки (КФП) щурів 14 діб геÑтації. Клітини заморожували за двома режимам під захиÑтом 7,5; 10 Ñ– 12,5% ДМСО. Визначали фенотипичний профіль КФП (CD34+СD38-, Sca-1+CD34-, Sca-1+CD34+, CD44-CD73+, CD44+CD73+), Ñ—Ñ… цитоморфологічні показники, кількіÑÑ‚ÑŒ та життєздатніÑÑ‚ÑŒ. Розроблений у даній роботі режим кріоконÑÐµÑ€Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ ÐšÐ¤ÐŸ забезпечував Ð·Ð±ÐµÑ€ÐµÐ¶ÐµÐ½Ð½Ñ Ð² гетерогенній популÑції клітини з імуномодулюючою активніÑÑ‚ÑŽ, Ñку оцінювали в ÑиÑтемі in vivo на моделі екÑпериментального атопічного дерматиту (ЕÐД). ЕкÑпериментально вÑтановлено ефективніÑÑ‚ÑŒ заÑтоÑÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ ÐºÑ€Ñ–Ð¾ÐºÐ¾Ð½Ñервованих КФП за режимом 1 (1 град/хв до −25°С; 5-хвилинна ÑÑ‚Ð°Ð±Ñ–Ð»Ñ–Ð·Ð°Ñ†Ñ–Ñ Ð¿Ñ€Ð¸ −25°С Ñ– Ð·Ð°Ð½ÑƒÑ€ÐµÐ½Ð½Ñ Ð² рідкий азот) з 10% ДМСО Ð´Ð»Ñ Ð²Ñ–Ð´Ð½Ð¾Ð²Ð»ÐµÐ½Ð½Ñ Ð¿Ð¾ÐºÐ°Ð·Ð½Ð¸ÐºÑ–Ð² крові та Ð·Ð½Ð¸Ð¶ÐµÐ½Ð½Ñ Ñ–Ð½Ñ‚ÐµÐ½ÑивноÑÑ‚Ñ– шкірних запальних реакцій у щурів із індукцією ЕÐД.

 

Біографії авторів

Maksim V. Ostankov, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріопатофізіології та імунології

Larisa A. Leonova, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріопатофізіології та імунології

Nikolay A. Bondarovich, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріопатофізіології та імунології

Lyudmila V. Ostankova, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріопатофізіології та імунології

Anatolyi M. Goltsev, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріопатофізіології та імунології

Посилання

Belous AM, Grishenko VI. [Cryobiology]. Kyiv: Naukova Dumka; 1994. 432 p. Russian.

Chinnici CM, Pietrosi G, Iannolo G, et al. Mesenchymal stromal cells isolated from human fetal liver release soluble factors with a potential role in liver tissue repair. Differentiation. 2019;105:14-26. CrossRef

Félix OMWO, Tunes G, Ginani VC, et al. The influence of cell concentration at cryopreservation on neutrophil engraftment after autologous peripheral blood stem cell transplantation. Hematol Transfus Cell Ther. 2018;40(3):233-9. CrossRef

Goltsev AN, Yampolskaya KY, Dubrava TG. [Identifi cation of fenotypical characteristics and an estimation of influence of various cryopreservation regimes on functional potential of fetal liver cells]. The Journal of V.N. Karazin Kharkiv National University. Series 'Biology' 2006; (4):110-20. Russian.

Goltsev AN, Dubrava TG, Ostankova LV, et al. Peculiarities of cryopreservation effect on functional potential of fetal liver hemopoietic stem cells of various gestation terms. Problems of Cryobiology. 2009;19(2): 186-99.

Goltsev AN, Bondarovich NA, Kuznyakov AV, et al. Determination of immunity T-cell link state and content of cancer stem cells as criterion to estimate efficiency of preventive breast cancer therapy with cryopreserved fetal liver cells. Probl Cryobiol Cryomed. 2014; 24(3):238-48. CrossRef

Goltsev AN, Gayevskaya YuA, Dubrava TG, Ostankova LV. Effect of cryopreservation on functional status of bone marrow hematopoietic and mesenchymal stem cells in animals with autoimmune pathology. Probl Cryobiol Cryomed. 2016; 26(1): 63-72. CrossRef

Gordienko EA, Pushkar NS. [Physical basis of low-temperature preservation of cell suspensions]. Kyiv: Naukova Dumka; 1994. 144p. Russian.

Grishchenko VI, Petrenko YuO, Skorobogatova NG, et al., inventors; Institute for Problems of Cryobiology and Cryomedicine, assignee. [Method of cryopreservation of hemoglobemic cells of human embryonic liver]. Patent of Ukraine â„– 67587A. 15.06.04. Ukrainian.

Grishchenko VI, Seminozhenko VP, Petrenko OYu, et al., inventors; Institute for Problems of Cryobiology and Cryomedicine, assignee. [Method of hematopoietic cells cryopreservation]. Patent of Ukraine â„– 58997A 15.08.03. Ukraine.

Grishenko VI, Goltsev A.N. Transplantation of the products of embrofetoplacental complex. From understanding of mechanism of the effect to increasing the efficiency of application. Problems of Cryobiology. 2002; 12(1): 54-84.

Hall SR, Jiang Y, Leary E, et al. Identification and isolation of small CD44-negative mesenchymal stem/progenitor cells from human bone marrow using elutriation and polychromatic flow cytometry. Stem Cells Transl Med. 2013; 2 (8):567-78. CrossRef

Humpe A, Beck C, Schoch R, et al. Establishment and optimization of a flow cytometric method for evaluation of viability of CD34+ cells after cryopreservation and comparison with trypan blue exclusion staining. Transfusion. 2005; 45(7): 1208-13. CrossRef

Ikemoto J, Yoshihara S, Kobayashi T, et al. Aldehyde dehydrogenase activity in cryopreserved cord blood cells for quality assessment prior to transplantation. Mol Med Rep. 2018;18(5):4530-34. CrossRef

Morrison SJ, Hemmati HD, Wandycz AM, et al. The purification and characterization of fetal liver hematopoietic stem cells. Proc Natl Acad Sci USA. [Internet]. 1995; 92(22): 10302-6. [Cited 05.09.19]. Available from: https://www.pnas.org/content/pnas/92/22/10302.full.pdf. CrossRef

Naaldijk Y, Staude M, Fedorova V, Stolzing A. Effect of different freezing rates during cryopreservation of rat mesenchymal stem cells using combinations of hydroxyethyl starch and dimethylsulfoxide. BMC Biotechnol. [Internet]. 2012;12:49. [Cited 05.09.2019] Available from: https://bmcbiotechnol.biomedcentral.com/articles/10.1186/1472-6750-12-49. CrossRef

Nho SH, Yoon G, Seo JH, et al. Licochalcone H induces the apoptosis of human oral squamous cell carcinoma cells via regulation of matrin 3. Oncol Rep. 2019; 41(1):333-40.CrossRef

Orlic D, Porcellini A, Rizolli V. Electron microscopy of human fetal liver erythroid cells before and after cryopreservation. Exp Hematol. 1982; 1(7): 628-36.

Ostankov MV. Effect of rapid two-step freezing on bone marrow cell integrity. Problems of Cryobiology. 2007;17 (3):283-9.

Ruiz-Delgado GJ, Mancías-Guerra C, Tamez-Gómez EL, et al. Dimethyl sulfoxide-induced toxicity in cord blood stem cell transplantation: report of three cases and review of the literature. Acta Haematol. [Internet]. 2009; 122(1): 1-5. [Cited 05.09.2019]. Available from: https://www.karger.com/Article/Abstract/227267. CrossRef

Volkovа NA, Yukhta MS, Goltsev AN. Morphological and functional characteristics of cryopreserved multipotent mesenchymal stromal cells from bone marrow, adipose tissue and tendons. Cell and Organ Transplantology. 2016; 4(2): 200-5. CrossRef

Xu Y, Fan WW, Xu W, et al. Yiguanjian decoction enhances fetal liver stem/progenitor cell-mediated repair of liver cirrhosis through regulation of macrophage activation state. World J Gastroenterol. 2018;24(42):4759-72. CrossRef

Yampolskaya KY, Goltsev AN, Gurina TM. [Changes in the functional potential of fetal liver cells depending on the mode of cryopreservation]. World of Medicine and Biology. 2007; (1): 89-93. Russian.

Zalkan PM, Ivleva EA [Experimental model of allergic dermatitis]. In: Dolgov AP, Raben AS, Antonev AA, editors. [Topical issues of professional dermatology]. Moscow: Meditsina, 1965. p 106-12.

Zhang W, Hu J, Ma Q, et al. Cryopreserved mouse fetal liver stromal cells treated with mitomycin C are able to support the growth of human embryonic stem cells. Exp Ther Med. 2014;8(3):935-42. CrossRef

Downloads

Опубліковано

2019-09-19

Як цитувати

Ostankov, M. V., Leonova, L. A., Bondarovich, N. A., Ostankova, L. V., & Goltsev, A. M. (2019). Вплив умов кріоконсервування на фенотиповий профіль та імуномодулююча активність клітин фетальної печінки. Проблеми кріобіології і кріомедицини, 29(3), 266–276. https://doi.org/10.15407/cryo29.03.266

Номер

Том 29 № 3 (2019): Проблеми кріобіології і кріомедицини

Розділ

Кріоконсервування біологічних систем

Ліцензія


Автори, які публікуються у цьому журналі, погоджуються з наступними умовами:

  • Автори залишають за собою право на авторство своєї роботи та передають журналу право першої публікації цієї роботи на умовах ліцензії Creative Commons Attribution License, котра дозволяє іншим особам вільно розповсюджувати опубліковану роботу з обов'язковим посиланням на авторів оригінальної роботи та першу публікацію роботи у цьому журналі.
  • Автори мають право укладати самостійні додаткові угоди щодо неексклюзивного розповсюдження роботи у тому вигляді, в якому вона була опублікована цим журналом (наприклад, розміщувати роботу в електронному сховищі установи або публікувати у складі монографії), за умови збереження посилання на першу публікацію роботи у цьому журналі.
  • Політика журналу дозволяє і заохочує розміщення авторами в мережі Інтернет (наприклад, у сховищах установ або на особистих веб-сайтах) рукопису роботи, як до подання цього рукопису до редакції, так і під час його редакційного опрацювання, оскільки це сприяє виникненню продуктивної наукової дискусії та позитивно позначається на оперативності та динаміці цитування опублікованої роботи (див. The Effect of Open Access).