Біологічно активні композиції, які містять нейротрофічні фактори, змінюють скоротливу активність детрузора щурів iз iнфравезiкальною обструкцією

Автор(и)

  • Vyacheslav Globa Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків
  • Tatyana Bondarenko Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків
  • Galina Bozhok Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків
  • Yana Samburg Харківська медична академія післядипломної освіти, м. Харків
  • Evgen Legach Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків

DOI:

https://doi.org/10.15407/cryo30.02.188

Ключові слова:

скоротлива активність, сечовий міхур, інфравезікальна обструкція, спiнальний ганглій, мантійні гліоцити, кріоекстракт, кріоконсервування

Анотація

Досліджували скоротливу активність сечового міхура (СМ) після введення біологічно активних композицій (БАК), що містять нейротрофічні фактори, у самок щурів iз інфравезікальною обструкцією, яку моделювали шляхом накладення лігатури на дистальний відділ сечового тракту. У якості БАК використовували кріоекстракт спiнальних гангліїв (СГ), кондиційовані середовища від культур нативних і кріоконсервованих мантійних гліоцитів (МГ), базове середовище культивування, препарат «Кортексін». Тваринам протягом 10 діб уводили БАК і визначали скоротливу активність (СА) ізольованих смужок СМ вимірюванням КСl-індукованої та агоніст-залежної відповідей. Застосування БАК, крім «Кортексіну», сприяло відновленню СА. Кондиційоване середовище від культури кріоконсервованих МГ і кріоекстракт СГ підвищували агоніст-залежну відповідь у 4,6 і 2,5 раза відповідно порівняно з СА контрольних тварин. У щурів цих груп виявлено найвищі показники максимальної амплітуди скорочення, подібні до контрольних.

Probl Cryobiol Cryomed 2020; 30(2): 188-198

Біографії авторів

Vyacheslav Globa, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Вiддiл кріоендокринології

Tatyana Bondarenko, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Вiддiл кріоендокринології

Galina Bozhok, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Вiддiл кріоендокринології

Evgen Legach , Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Вiддiл кріоендокринології

Посилання

Ali S, Bozhok G. Effect of cryopreservation on different passages of porcine dorsal root ganglion cell culture. Recent Adv Biol Med [Internet]. 2019 Nov 2 [cited 2020 Mar 17];5: 941755. Available from: https://rabm.scholasticahq.com/article/10899-effect-of-cryopreservation-on-different-passages-of-porcine-dorsal-root-ganglion-cell-culture CrossRef

AlÑ– SG, Sidorenko ОS, Bozhok GÐ. [Influence of nutrient medium composition on the morphological characteristics of culture of dorsal root ganglion cells of neonatal piglets]. The Journal of V. N. Karazin Kharkiv National University. Series «Biology». 2018; 30 (30): 49-59. Ukrainian. CrossRef

Andersson KE. Potential of stem cell treatment in detrusor dysfunction. Adv Drug Deliv Rev. 2015; (82-83): 117-22. CrossRef

Banks FC, Knight GE, Calvert RC, et al. Alterations in purinergic and cholinergic components of contractile responses of isolated detrusor contraction in a rat model of partial bladder outlet obstruction. BJU Int. 2006; 97 (2): 372-8. CrossRef

Barendrecht MM, Chichester P, Michel MC, Levin RM. Effect of short-term outlet obstruction on rat's bladder nerve density and contractility. Auton Autacoid Pharmacol. 2007; 27 (1): 47-53. CrossRef

Baskin LS, Sutherland RS, Thomson AA, et al. Growth factors and receptors in bladder development and obstruction. Lab Invest. 1996; 75 (2): 157-66.

Bradford MM. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Anal Biochem. 1976; 72 (1-2): 248-54. CrossRef

Choppin A. Muscarinic receptors in isolated urinary bladder smooth muscle from different mouse strains. Br J Pharmacol. 2002; 137 (4): 522-8. CrossRef

Cumming JA, Chisholm GD. Changes in detrusor innervation with relief of outflow tract obstruction. Br J Urol. 1992; 69 (1): 7-11. CrossRef

Downi JW, McGuire RP. Antagonism of calcium-induced contraction in potassium-depolarized rabbit detrusor muscle strips by dicyclomine hydrochloride and rodverine. Can J Physiol Pharmacol. 1981; 59 (8): 853-6. CrossRef

Ekman M, Zhu B, Swärd K, Uvelius B. Neurite outgrowth in cultured mouse pelvic ganglia - Effects of neurotrophins and bladder tissue. Auton Neurosci. 2017; 205 (1): 41-9. CrossRef

Fry CH. Experimental models to study the physiology, pathophysiology, and pharmacology of the lower urinary tract. J Pharmacol Toxicol Methods. 2004; 49 (3): 201-10. CrossRef

Fusco F, Creta M, De Nunzio C, et al. Progressive bladder remodeling due to bladder outlet obstruction: a systematic review of morphological and molecular evidences in humans. BMC Urol [Internet]. 2018 Mar 09 [Cited 2019 Oct 22]; 18 (1): 15. Available from: https://bmcurol.biomedcentral.com/articles/10.1186/s12894-018-0329-4 CrossRef

Goldman HB, Zimmern PE. The treatment of female bladder outlet obstruction. BJU Int. 2006; 98 (Suppl 1):S17-S23. CrossRef

Gomazkov OA. [Neurotrophic factors of the brain]. Reference-informational edition. [Internet]. Moscow: Institute of Biomedical Chemistry Russian Academy of Medical Sciences; 2004 [cited 2019 Oct 28]. 311 p. Available from: https://www.booksmed.com/biologiya/2166. Russian.

Gomazkov OA. [Neurotrophic therapy and concept of «minipeptides»]. Consilium medicum. 2013; (2): 105-9. Russian.

Juan YS, Chuang SM, Jang MY, et al. Basic research in bladder outlet obstruction. Incon Pelvic Floor Dysfunct [Internet]. 2011 [Cited 2019 Oct 24]; 5 (1):1-6. Available from: http://www.tcs.org.tw/issue/folder/5_1/1-6.pdf.

Kim JC, Yoo JS, Park EY, et al. Muscarinic and purinergic receptor expression in the urothelium of rats with detrusor overactivity induced by bladder outlet obstruction. BJU Int. 2008; 101 (3): 371-5. CrossRef

Kullmann FA, Daugherty SL, de Groat WC, Birder LA. Bladder smooth muscle strip contractility as a method to evaluate lower urinary tract pharmacology. J Vis Exp [Internet]. 2014 Aug 18 [Cited 2019 Oct 24]; (90), e51807. Available from: https://www.jove.com/video/51807/bladder-smooth-muscle-strip-contractility-as-method-to-evaluate-lower CrossRef

Levi-Montalcini R. [Factors of tissue and nerve growth]. Mezhdunarodnyi nevrologicheskii zhurnal [Internet]. 2012 [Cited 28.10.2019]; 3 (49): 29728. Available from: http://www.mif-ua.com/archive/article/29728/. Russian.

Levin R, Chichester P, Levin S, Buttyan R. Role of angiogenesis in bladder response to partial outlet obstruction. Scand J Urol Nephrol Suppl. 2004; 38 (215): 37-47. CrossRef

Levin RM, Longhurst PA, Monson FC, et al. Effect of bladder outlet obstruction on the morphology, physiology, and pharmacology of the bladder. The Prostate. 1990; 17 (Suppl 3): S9-S26. CrossRef

Levin RM, Ruggieri MR, Velagapudi S, et al. Relevance of spontaneous activity to urinary bladder function: an in vitro and in vivo study. J Urol. 1986; 136 (2): 517-21. CrossRef

Lin WY, Wu CF, Chen CS. Partial bladder outlet obstruction: bladder dysfunction and related issues in animal studies. Urol Sci. 2010; 21 (2): 70−4. CrossRef

Milicic I, Buckner SA, Daza A, et al. Pharmacological characterization of urinary bladder smooth muscle contractility following partial bladder outlet obstruction in pigs. Eur J Pharmacol. 2006; 532 (1-2): 107-14. CrossRef

Minagawa T, Imamura T, Igawa Y, et al. Differentiation of smooth muscle cells from human amniotic mesenchymal cells implanted in the freeze-injured mouse urinary bladder. European Urology. 2010; 58 (2): 299-306. CrossRef

Zhang NZ, Ma L, Zhang JB, Chen J. Improved model for the establishment and evaluation of detrusor overactivity in female Wistar rats. Int Braz J Urol. 2014; 40 (3): 414-22. CrossRef

Sezginer EK, Yilmaz-Oral D, Lokman U, et al. Effects of varying degrees of partial bladder outlet obstruction on urinary bladder function of rats: A novel link to inflammation, oxidative stress and hypoxia. Low Urin Tract Symptoms. 2019; 11 (2): 193-201. CrossRef

Shavlovskaya OA. [Clinical efficacy of neuropeptides in cerebrovascular pathology]. S.S. Korsakov Journal of Neurology and Psychiatry. 2016; 116 (8): 88-93. Russian. CrossRef

Skaper SD. Neurotrophic Factors. Methods in Molecular Biology (Methods and Protocols). Vol. 846. Totowa, USA: Humana Press; 2012. Chapter 1, The neurotrophin family of neurotrophic factors: an overview; p. 1-12. CrossRef

Speakman MJ, Brading AF, Gilpin CJ, et al. Bladder outflow obstruction-a cause of denervation supersensitivity. J Urol. 1987; 138 (6): 1461-6. CrossRef

Stoll G, Müller HW. Nerve injury, axonal degeneration and neural regeneration: basic insights. Brain Pathology. 2006; 9 (2): 313-25. CrossRef

Subota NP, Gryschenko VI, Rozanova KD, inventors; Institute for problems of cryobiology and cryomedicine of the National Academy of Sciences of Ukraine, assignee. [Method for producing fetal preparations]. Patent of Ukraine â„– 36466 A. 2001 April 16. Ukrainian.

Terenghi G. Peripheral nerve regeneration and neurotrophic factors. J Anat. 1999; 194 (1): 1-14. CrossRef

Uvelius B. Isometric and isotonic length-tension relations and variations in cell length in longitudinal smooth muscle from rabbit urinary bladder. Acta Physiol Scand. 1976; 97 (1): 1-12. CrossRef

Vetter I, Pujic Z, Goodhill GJ. The response of dorsal root ganglion axons to nerve growth factor gradients depends on spinal level. J Neurotrauma. 2010; 27 (8): 1379-86. CrossRef

Wein AJ, Rackley RR. Overactive bladder: a better understanding of pathophysiology, diagnosis and management. J Urol. 2006; 175(3 Pt 2): 5-10. CrossRef

Workshop 3: ICS methodology in basic science [Internet]. Tokyo, International Continence Society; 2016 Sept 13. [Cited 2019 Oct 22]. 25p. Available from: https://www.ics.org/Workshops/HandoutFiles/000621.pdf.

Yoshida S, Orimoto N, Tsukihara H, et al. TAC-302 promotes neurite outgrowth of isolated peripheral neurons and prevents bladder denervation related bladder dysfunctions following bladder outlet obstruction in rats. Neurourol Urodyn. 2017; 37 (2): 681-9. CrossRef

Yoshimura N, Ogawa T, Miyazato M, et al. Neural mechanisms underlying lower urinary tract dysfunction. Korean J Urol 2014 ; 55 (2): 81-90. CrossRef

Downloads

Опубліковано

2020-06-26

Як цитувати

Globa, V., Bondarenko, T., Bozhok, G., Samburg, Y., & Legach , E. (2020). Біологічно активні композиції, які містять нейротрофічні фактори, змінюють скоротливу активність детрузора щурів iз iнфравезiкальною обструкцією. Проблеми кріобіології і кріомедицини, 30(2), 188–198. https://doi.org/10.15407/cryo30.02.188

Номер

Розділ

Кріомедицина, клінічна та експериментальна трансплантологія