Вплив температури на взаємодію поліетиленгліколю з мембранами та орієнтаційний порядок білків цитоскелета еритроцитів людини

Автор(и)

  • Nina Zemlianskykh Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків, Україна https://orcid.org/0000-0002-0790-9271
  • Lyubov Babijchuk Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків, Україна https://orcid.org/0000-0002-1915-5470

Ключові слова:

еритроцит, мембрана, поліетиленгліколь, кріопротекторний агент, гідрофобні взаємодії, орієнтаційний порядок білків мембрани

Анотація

У роботі визначено відмінності у характері модифікації мембран еритроцитів при експонуванні з поліетиленгліколем з молекулярною масою 1500 (ПЕГ) за різних температур (4 і 37 оС) із використанням флуоресцентного зонда 4-(n-диметиламіностирил)-1-метилпіридиній-n-толуолсульфонату (ДСМ), а також зміни орієнтаційного порядку білків мембрано-цитоскелетного комплексу за допомогою поляризаційної мікроскопії. Експонування еритроцитів із ПЕГ при 37 оС спричиняє повне зникнення гідрофобного компонента флуоресцентного спектра ДСМ через конкурування молекул ПЕГ і зонда за ділянки зв’язування. Зниження температури експонування клітин з кріопротекторним агентом (КПА) до 4 оС зменшує можливість його гідрофобних контактів із мембранами клітин, що підтверджується присутністю гідрофобної складової спектра, хоча на нижчому рівні, ніж у контролі. Зменшення гідрофобних контактів ПЕГ із мембранами при зниженні температури на етапі експонування еритроцитів з КПА дає змогу значною мірою зберегти орієнтаційний порядок молекул мембранного цитоскелета як у процесі інкубування з КПА, так і після заморожування–відтавання клітин.

Probl Cryobiol Cryomed. 2026; 36(1): 16—26.

Біографії авторів

Nina Zemlianskykh, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків, Україна

Відділ кріоцитології

Lyubov Babijchuk, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків, Україна

Відділ кріоцитології

Посилання

Abriata LA, Spiga E, Peraro MD. Molecular effects of concentrated solutes on protein hydration, dynamics, and electrostatics. Biophys J. 2016; 111(4): 743-55. CrossRef

Anchordoguy TJ, Carpenter JF, Crowe JH, Crowe LM. Temperature-dependent perturbation of phospholipid bilayers by dimethylsulfoxide. Biochim Biophys Acta. 1992; 1104(1): 117-22. CrossRef

Arakawa T, Ejima D, Timasheff SN. Suppression of protein interactions by arginine: a proposed mechanism of the arginine effects. Biophys Chem. 2007; 127(1-2): 1-8. CrossRef

Arimoto R, Murray JM. Orientation-Dependent Visibility of Long Thin Objects in Polarization-Based Microscopy. Biophys J. 1996; 70(6): 2969-80. CrossRef

Arnold K, Pratsch L, Gawrisch K. Effect of poly(ethylene glycol) on phospholipid hydration and polarity of the external phase. Biochim Biophys Acta. 1983; 728(1): 121-8. CrossRef

Bailey FE, Koleske JV. Poly(ethylene oxide). New-York: Academic Press. 1976; 173 р. CrossRef

Bhat R, Timasheff SN. Steric exclusion is the principal source of the preferential hydration of proteins in the presence of polyethylene glycols. Protein Sci. 1992; 1(9): 1133-43. CrossRef

Chen J, Spear SK, Huddleston JG, Rogers RD. Polyethylene glycol and solutions of polyethylene glycol as green reaction media. Green Chem. 2005; 7(2): 64-82. CrossRef

Dyubko TS. Interaction of cryoprotectants with model membranes with high cholesterol content. Problems of Cryobiology 2006; 16(3); 271-85. Full Text

Gekko K, Timasheff SN. Mechanism of protein stabilization by glycerol: preferential hydration in glycerol-water mixtures. Biochemistry. 1981; 20(16): 4667-76. CrossRef

Gorbenko GP, Dyubko TS. [Study of radiation-induced change in the membrane structure by means of fluorescent probe.] Ukr Biochem J. 1995; 67(1); 100-5. Russian

Kita Y, Arakawa T, Timasheff SN. Contribution of the surface free energy perturbation to protein-solvent interactions. Biochemistry. 1994; 33(50): 15178-89. CrossRef

Naidu KT, Prabhu NP. An able-cryoprotectant and a moderate denaturant: distinctive character of ethylene glycol on protein stability. J Biomol Struct Dyn. 2022; 40(2): 820-32. CrossRef

Peng L, Qi Y, Wu H, Wei Q. Interaction of glycerol with calcineurin A studied by spectroscopic methods and docking. IUBMB Life. 2011; 63(1): 14-20. CrossRef

Saakian ShS, Minasiants MKh, Dadivanian AK. [Structural research on the membranes and adjacent layers of erythrocytes during the production of erythrocyte ghosts]. Nauchnye Dokl Vyss Shkoly Biol Nauki. 1988; (9): 24-6. Russian. PubMed

Stanley C, Rau DC. Measuring the interaction of urea and protein-stabilizing osmolytes with the nonpolar surface of hydroxypropylcellulose. Biochemistry. 2008; 47(25): 6711-8. CrossRef

Yeagle PL, Bennett M, Lemaître V, Watts A. Transmembrane helices of membrane proteins may flex to satisfy hydrophobic mismatch. Biochim Biophys Acta. 2007; 1768(3): 530-7. CrossRef

Zemlyanskikh NG, Belous AM. [Interaction of polyethylene oxide with RBC plasma membrane after cooling and freezing.] Dokl Nat Acad Sci Ukraine. 1995; (3): 119-21. Russian.

Zemlyanskikh N.G. [About problem of stability of erythrocytes preserved under polyethylene glycol protection.] Visnyk problem biologii i medycyny. 2007; (3): 32-7. Russian.

Zemlianskykh NG. Effect of substances with cryoprotective properties on surface marker CD44 in human erythrocytes. Tsitol Genet. 2016; 50(3), 203-13. CrossRef

Zemlianskykh NG, Babiychuk LO. Modifications of proteins of membrane-cytoskeleton complex and production of reactive oxygen species in erythrocytes cryopreserved with polyethylene glycol. Fiziol Zh. 2021; 67(2): 44-52). CrossRef

Downloads

Опубліковано

2026-05-24

Як цитувати

Zemlianskykh, N., & Babijchuk, L. (2026). Вплив температури на взаємодію поліетиленгліколю з мембранами та орієнтаційний порядок білків цитоскелета еритроцитів людини. Проблеми кріобіології і кріомедицини, 36(1), 16–26. вилучено із https://cryo.org.ua/journal/index.php/probl-cryobiol-cryomed/article/view/2180

Номер

Розділ

Теоретична та експериментальна кріобіологія