Функциональная активность адренокортикоцитов крыс после инкубации в криозащитных средах на основе ДМСО, содержащих эмбриональную телячью сыворотку

Автор(и)

  • Taisiya A. Yurchuk Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків
  • Galina A. Bozhok Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків
  • Natalia M. Alabedalkarim Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків
  • Tatyana P. Bondarenko Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків

DOI:

https://doi.org/10.15407/cryo24.01.047

Ключові слова:

адренокортикоцити, диметилсульфоксид, ембріональна теляча сироватка, альдостерон, 3beta-гідрокси-стероїддегідрогеназа, JC-1

Анотація

Ð’Ð¸Ð²Ñ‡ÐµÐ½Ð½Ñ Ñ„ÑƒÐ½ÐºÑ†Ñ–Ð¾Ð½Ð°Ð»ÑŒÐ½Ð¾Ð³Ð¾ Ñтану клітин на різних етапах кріоконÑÐµÑ€Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ Ñ” важливим Ð´Ð»Ñ ÑÑ‚Ð²Ð¾Ñ€ÐµÐ½Ð½Ñ Ñ‚Ð° удоÑÐºÐ¾Ð½Ð°Ð»ÐµÐ½Ð½Ñ Ð¿Ñ€Ð¾Ñ‚Ð¾ÐºÐ¾Ð»Ñ–Ð² Ð·Ð°Ð¼Ð¾Ñ€Ð¾Ð¶ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ ÐµÐ½Ð´Ð¾ÐºÑ€Ð¸Ð½Ð½Ð¸Ñ… клітин. У роботі оцінювали вплив інкубації в Ñередовищах з 5, 7, 10 та 15% диметилÑульфокÑиду (ДМСО), а також у Ñередовищах з ДМСО та 25% ембріональної телÑчої Ñироватки (ЕТС) на показники ÑуÑпензії клітин кори наднирників: життєздатніÑÑ‚ÑŒ (МТТ-теÑÑ‚), вміÑÑ‚ клітин з активною 3b-гідрокÑиÑтероїддегідрогеназою, функціонально активними мітохондріÑми (теÑÑ‚ з JC-1), а також рівень базальної та Ñтимульованої Ñекреції альдоÑтерону. Показано, що приÑутніÑÑ‚ÑŒ ЕТС у Ñкладі кріозахиÑного Ñередовища призводила до Ð·Ð½Ð¸Ð¶ÐµÐ½Ð½Ñ Ñ‚Ð¾ÐºÑичної дії ДМСО на адренокортикоцити під Ñ‡Ð°Ñ Ñ–Ð½ÐºÑƒÐ±Ð°Ñ†Ñ–Ñ—, більш того, в деÑких випадках піÑÐ»Ñ Ñ–Ð½ÐºÑƒÐ±Ð°Ñ†Ñ–Ñ— в Ñередовищах із ДМСО й ЕТС ÑпоÑтерігалоÑÑ Ð·Ð±Ñ–Ð»ÑŒÑˆÐµÐ½Ð½Ñ Ð²Ð¼Ñ–Ñту клітин з функціонально активними мітохондріÑми та клітин з активним Ñтероїдогенезом у порівнÑнні з ÑуÑпензією клітин, що не піддавалиÑÑ Ð²Ð¿Ð»Ð¸Ð²Ñƒ кріопротектора. 

Біографії авторів

Taisiya A. Yurchuk, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ біохімії та фармакології нейрогуморальних ÑиÑтем

Galina A. Bozhok, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ біохімії та фармакології нейрогуморальних ÑиÑтем

Natalia M. Alabedalkarim, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ біохімії та фармакології нейрогуморальних ÑиÑтем

Tatyana P. Bondarenko, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ біохімії та фармакології нейрогуморальних ÑиÑтем

Посилання

Benton L., Shan L.X., Hardy M.P. Differentiation of adult Leydig cells. J Steroid Biochem Mol Biol 1995; 53(1): 61–68. CrossRef

Chen G.-R., Ge R.-S., Lin H. et al. Development of a cryopreservation protocol for Leydig cells. Hum Reprod 2007; 22(8): 2160–2168. CrossRef PubMed

Cossarizza A., Baccarani-Contri M., Kalashnikova G. et al. A new method for the cytofluorimetric analysis of mitochondrial membrane potential using the J-aggregate forming lipophilic cation 5,5',6,6'-tetrachloro-1,1',3,3' tetraethylbenzimidazolyl-carbocyanine iodide (JC-1). Biochem Biophys Res Commun 1993; 197(1): 40–45. CrossRef PubMed

Ferrari M., Fornasiero M.F., Chiara M., Isetta A.M. MTT colorimetric assay for testing macrophage cytotoxic activity in vitro. J Immunol Meth 1990; 131: 165–172. CrossRef

Grischenko V.I., Bondarenko T.P., Legach Ye.I. et al. Procurement, cryopreservation and clinical application of newborn piglet adrenal gland organ culture in therapy of renal failure [Methodical recommendations]. Kharkiv; 2000. PubMed

Grischenko V.I., Chuyko V.A., Pushkar M.S. Cryopreservation of endocrine organ tissues and cells. Kyiv: Naukova Dumka; 1993.

Hafez M.M., Heidger P.M. Stereological study of Leydig cell density in the guinea pig testis. J Arch Androl 1986; 17(1): 1–7. CrossRef

Huveneers-Oorsprong M.B., Hoogenboom L.A., Kuiper H.A. The use of the MTT test for determining the cytotoxicity of veterinary drugs in pig hepatocytes. Toxicol In Vitro 1997; 11(4): 385–392. CrossRef

Kardak A., Leibo S.P., Devireddy R. Membrane transport properties of equine and macaque ovarian tissues frozen in mixtures of dimethylsulfoxide and ethylene glycol. J Biomech Eng 2007; 29(5): 688–694. CrossRef PubMed

Karpenko L.G., Gubina N.F., Schirova V.A., Kaprelyants A.S The effects of freezing and cryoprotectant exposure on adenylate cyclase activity in cell membranes of bovine thyroid gland and adrenal cortex. CryoLetters 2001; 22(4): 229–234.

Legach E.I., Bozhok G.A., Bondarenko T.P. Cryopreserved organ culture of endocrine glands for hormonal insufficiency treatment. Endocr Abstracts 2010; 22: 190.

Lopesa C.A., Santos R.R., Celestino J.J. Short-term preservation of canine preantral follicles: effects of temperature, medium and time. Animal Reprod Science 2009; 115(1): 201–214. CrossRef PubMed

Menorval M.-A., Lluis M.M., Fernandez M.L., Reigada R. Effects of dimethyl sulfoxide in cholesterol-containing lipid membranes: a comparative study of experiments in silico and with cells. PLoS One 2012; 7: e41733. CrossRef PubMed

Midzak A.S., Chen H., Aon M.A. et al. ATP synthesis, mitochondrial function, and steroid biosynthesis in rodent primary and tumor Leydig cells. Biol Reprod 2011; 84(5): 976–985. CrossRef PubMed

Murthy K.S. cAMP inhibits IP3-dependent Ca2+ release by preferential activation of cGMP-primed PKG. Am. J. Physiol. Gastrointest. Liver Physiol 2001; 275(5): 1238–1245.

Novikova L.A., Faletrov Ya.V., Kovaleva I.E. et al. From structure and functions of steroidogenic enzymes to new technologies of gene engineering. Biochemistry 2009; 74(13): 1482–1504. CrossRef

Nuydens R., Novalbos J., Dispersyn G. et al. A rapid method for the evaluation of compounds with mitochondria-protective properties. J Neurosci Methods 1999; 92(1–2): 153–159. CrossRef

Pogorelyy V.K., Turov V.V., Turov A.V. Investigation of interactions between serum albumin and dimethyl sulfoxide by PMR spectra of frozen aqueous solutions. Teor Eksperim Khimiya 1989; (1): 104–108.

Pushkar N.S., Chuyko V.A., Utevsky A.M. et al. Preservation and transplantation of endocrine organs and tissues. Kharkov; 1981.

Sidorenko O.S., Bozhok G.A., Legach E.I., Gurina T.M. Study of possibility to obtain and cryopreserve adrenal cell primary culture of newborn piglets. Problems of Cryobiology 2011; 21(1): 58–67.

Silani V. Cryopreservation of human fetal adrenal medullary cells. Brain Res 1988; 28(454(1–2)): 383–386. CrossRef

Smiley S.T., Reers M., Mottola-Hartshorn C. et al. Intracellular heterogeneity in mitochondrial membrane potential revealed by a j-aggregate forming lipophilic cation JC-1. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1991; 88: 3671–3675. CrossRef

Tze W.J., Tai J., Kardak A. Successful banking of pancreatic endocrine cells for transplantation. Metabolism 1990; 39(7): 719–723. CrossRef

Woollacott A.J., Simpson P.B. High throughput fluorescence assays for the measurement of mitochondrial activity in intact human neuroblastoma cells. J Biomol Screen 2001; 6(6): 413–420. CrossRef

Zhang W., Wang M., Xie H.Y. et al. Role of reactive oxygen species in mediating hepatic ischemia-reperfusion injury and its therapeutic applications in liver transplantation. Transplant Proc 2007; 39(5): 1332–1337. CrossRef PubMed

Zhao J., Hao H.N., Thomas R.L. et al. An efficient method for the cryopreservation of fetal human liver hematopoietic progenitor cells. Stem Cells 2001; 19(3): 118–212. CrossRef PubMed

Yurchuk T.A., Bozhok G.A., Borovoy I.A. et al. Effect of cryopreservation in serum-free and serum-enriched cryoprotective media on formation of j-aggregates in rat adrenal cortex cells. Problems of Cryobiology 2011; 21(4): 408–415.

Опубліковано

2014-03-25

Як цитувати

Yurchuk, T. A., Bozhok, G. A., Alabedalkarim, N. M., & Bondarenko, T. P. (2014). Функциональная активность адренокортикоцитов крыс после инкубации в криозащитных средах на основе ДМСО, содержащих эмбриональную телячью сыворотку. Проблеми кріобіології і кріомедицини, 24(1), 47–56. https://doi.org/10.15407/cryo24.01.047

Номер

Розділ

Теоретична та експериментальна кріобіологія