ОÑобенноÑти Ð¸Ð·Ð¼ÐµÐ½ÐµÐ½Ð¸Ñ Ñтруктурно-функциональных характериÑтик Ñтволовых кроветворных клеток из разных иÑточников поÑле криоконÑервированиÑ
DOI:
https://doi.org/10.15407/cryo24.02.118Ключові слова:
кріоконÑервуваннÑ, фетальна печінка, клітини кіÑткового мозку, Ñтовбурові кровотвірні клітиниАнотація
Проведений порівнÑльний аналіз Ñтруктурно-функціонального ÑтатуÑу Ñтовбурових кровотвірних клітин (СКК) фетальної печінки (ФП) 14-Ñ— доби геÑтації та дороÑлого кіÑткового мозку (КМ) мишей лінії СВÐ/H 4-міÑÑчного віку продемонÑтрував не тільки відмінноÑÑ‚Ñ– їхніх вихідних ÑкіÑно-кількіÑних характериÑтик, але й різну відповідь на дію чинників кріоконÑервуваннÑ. Клітини ФП або КМ заморожували за різними режимами під захиÑтом 5 Ñ– 10% диметилÑульфокÑиду. Ð”Ð»Ñ Ð¾Ñ†Ñ–Ð½ÐºÐ¸ Ñтруктурно-функціональних характериÑтик СКК із різних джерел викориÑтовували методи цитофлуориметрії (вміÑÑ‚ CD34+СD38–-клітин), ÐºÐ¾Ð»Ð¾Ð½Ñ–Ñ”ÑƒÑ‚Ð²Ð¾Ñ€ÑŽÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ in vivo (КУОÑ) та in vitro (КУО-ГМ). Ð’Ñтановлено, що певні режими кріоконÑÐµÑ€Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ Ð·Ð´Ð°Ñ‚Ð½Ñ– виÑвлÑти ефект Ñелективного Ð·Ð±Ð°Ð³Ð°Ñ‡ÐµÐ½Ð½Ñ Ð¿Ð¾Ð¿ÑƒÐ»Ñцій клітин із фенотиповими ознаками кровотвірних попередників (CD34+СD38–-клітини). ЗіÑÑ‚Ð°Ð²Ð»ÐµÐ½Ð½Ñ Ð²Ð¼Ñ–Ñту КОЕÑ, КУО-ГМ, СКК та клітин із фенотипом CD34+СD38– показало, що режимкріоконÑÐµÑ€Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ Ð´Ð»Ñ ÐºÐ»Ñ–Ñ‚Ð¸Ð½ ФП не Ñ” «оптимальним» Ð´Ð»Ñ ÐšÐœ. Показано, що при варіюванні умов кріоконÑÐµÑ€Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ Ð¼Ð¾Ð¶Ð½Ð°
забезпечувати не тільки «оптимальну» збереженіÑÑ‚ÑŒ кровотвірних попередників із ФП та КМ Ñ– різним вихідним функціональним ÑтатуÑом, а й направлено регулювати його.
Посилання
Burdon T.J., Paul A., Noiseux N. et al. Bone marrow stem cell derived paracrine factors for regenerative medicine: current perspectives and therapeutic potential. Bone Marrow Research 2011; 2011. Article ID 207326.
Catacchio I., Berardi S., Reale A. et al. Evidence for bone marrow adult stem cell plasticity: properties, molecular mechanisms, negative aspects, and clinical applications of hematopoietic and mesenchymal stem cells transdifferentiation. Stem Cells Int 2013; 2013. Article ID 589139.
Dubrava T.G. Efficiency of hemopoietic cell cryopreservation depending on their initial properties [dissertation]. Kharkov; 2005.
Ema H., Nakauchi H. Expansion of hematopoietic stem cells in the developing liver of a mouse embryo. Blood 2000; 95(7): 2284–2288. PubMed
Goltsev A.N., Babenko N.N., Dubrava T.G. et al. Modification of the state of bone marrow hematopoietic cells after cryopreservation. Int J Refrigeration 2006; 29(3): 358–367. CrossRef
Goltsev A.N., Dubrava T.G., Gayevskaya Yu.A. et al. Cryobiological technologies as a component of optimized methods in therapy of autoimmune diseases. Klin Imunol Alergol Infektol 2009; (1–2): 46–51.
Goltsev A.N., Dubrava T.G., Lutsenko E.D., et al. Search for the alternative to cryopreservation methods of modifing the immunereactivity of the allomyelotransplant. II. Possible co-transplantation of embryonic liver cells. Problems of Cryobiology 2000; (1): 10–21.
Goltsev A.N., Dubrava T.G., Ostankova L.V., et al. Peculiarities of cryopreservation effect on functional potential of fetal liver hemopoietic stem cells of various gestation terms. Problems of Cryobiology 2009; 19(2): 186–199.
Goltsev A.N., Grischenko V.I., Sirous M.A. et al. Cryopreservation: an optimizing factor for therapeutic potential of fetoplacental complex products. Biopreservation and Biobanking 2009; 7(1): 29–38. CrossRef PubMed
Goltsev A.N., Matsevitaya I.Yu., Lutsenko Ye.D., et al. On the modification of immunoreactivity of myelotransplant after cryopreservation. Problems of Cryobiology 2010; 20(2): 145–152.
Goltsev A.N., Ostankova L.V., Dubrava T.G. et al. Cryopreservation as the factor of modification of structural and functional state and the realization mechanism of therapeutic effect of compartment stem cells under autoimmune genesis pathology development. In: Goltsev A.N., editor. Current problems of cryobiology and cryomedicine. Kharkov; 2012. p. 543–551.
Goltsev A.N., Safranchuk O.V., Bondarovich M.O. et al. Change in cryolability of stem tumor cells depending on adenocarcinoma growth phase. Fiziol Zhurnal 2011; 57(4): 68–76.
Hattori Y., Kato H., Nitta M., Takamoto S. Decrease of L-selectin expression in human CD34+ cells on freeze–thawing and rapid recovery with short-term incubation. Exp Hematol 2001; 29(1): 114–112. CrossRef
Huang S., Law P., Ho A.D. Candidate hematopoietic stem cells from fetal tissues, umbilical cord blood vs. adult bone marrow and mobilized peripheral blood. Exp Hematol 1998; 26(12): 1162–1171. PubMed
Kozlova Yu.A., Goltsev A.N., Ostankov M.V. Influence of certain physical and chemical factors of cryopreservation on bone marrow cells with various initials structural an functional status. Problems of Cryobiology 2003; (4): 3–11.
Ljungman P., Bregni M., Brune M. et al. Allogeneic and autologous transplantation for haematological diseases, solid tumours and immune disorders: current practice in Europe 2009. Bone Marrow Transplant 2010; 45(2): 219–234. CrossRef PubMed
Lutsenko E.D. Application of penning-methods for obtaining enriched stem cells of population from cryopreserved bone marrow. Problems of Cryobiology 1995; (4): 52–54.
Micklem H.S., Ford C.E., Evans E.P. et al. Competitive in vivo proliferation of foetal and adult haematopoietic cells in lethally irradiated mice. J Cell Physiol 1972; 79(2): 293–298. CrossRef PubMed
Ng Y.Y., van Kessel B., Lokhorst H.M. et al. Gene-expression profiling of CD34+ cells from various hematopoietic stem-cell sources reveals functional differences in stem-cell activity. J Leukoc Biol 2004; 75(2): 314–323. CrossRef PubMed
Nielsen J.S., McNagny K.M. Novel functions of the CD34 family. J Cell Sci 2008; 121: 3682–3692. CrossRef PubMed
Ojeda-Uribe M. Peripheral blood and BM CD34+CD38– cells show better resistance to cryopreservation than CD34+CD38+ cells in autologous stem cell transplantation. Cytotherapy 2004; 6(6): 571–583. CrossRef PubMed
Orkin S.H., Nathan D.G., Ginsburg D. et al., editors. Nathan and Oski's hematology of infancy and childhood. Philadelphia: Elsevier; 2009.
Porozhan Ye.A., Ostankov M.V., Babenko N.N., Goltsev A.N. Assessment of phenotype characteristics of fetal neural cells after cryopreservation using different freezing regimens. Problems of Cryobiology 2012; 22(1): 39–48.
Rosillo M.C., OrtuÑo F., Rivera J., Moraleda J.M, Vicente V. Cryopreservation modifies flow-cytometric analysis of hemopoietic cells. Vox Sang 1995; 68(4): 210–214. CrossRef PubMed
Rowley S.D., Bensinger W.I., Gooley T.A. Effect of cell concentration on bone marrow and peripheral blood stem cell cryopreservation. Blood 1994; 83(9): 2731–2736. PubMed
Rubinshtein A., Trobaugh F. Ultrastructure of presumptive hematopoietic stem cells. Blood 1973; 42(1): 61–80.
Shereshkov S.I. Culturing of hemapoietic cells on semisolid nutrient media. Lab Delo 1974; (3): 146–150.
Shizuru J.A., Negrin R.S., Weissman I.L. Hematopoietic stem and progenitor cells: clinical and preclinical regeneration of the hematolymphoid system. Annu Rev Med 2005; 56: 509–538. CrossRef PubMed
Suzuki A., Zheng Y., Kaneko S. et al. Clonal identication and characterization of self–renewing pluripotent stem cells in the developing liver. J Cell Biol 2002; 156(1): 173–184. CrossRef PubMed
Till J.E., McCulloch E.A. A direct measurement of the radiation sensitivity of normal mouse bone marrow cells. Radiat Res 1961; 14: 213–222. CrossRef
Tyndall A., Gratwohl A. Hemopoietic blood and marrow transplants in the treatment of severe autoimmune disease. Curr Opin Hematol 1997; 4(6): 390–394. CrossRef
Vermel A.E. Stem cells: total characteristic and application perspectives in clinical practice. Klin Meditsina 2004; (1): 5–11.
Wu D.D., Nayar R., Keating A. Synergistic effect of stem cell factor with interleukin-3 or granulocyte-macrophage colony-stimulating factor on the proliferation of murine primitive hematopoietic progenitors. Exp Hematol 1994; 22(6): 495–500. PubMed
Yampolskaya K.Ye., Goltsev A.N., Gurina T.M. Change in functional potential of fetal liver cells dependent from cryopreservation regimen. Svit Meditsiny i Biologii 2007; (1): 89–93.
Downloads
Опубліковано
Як цитувати
Номер
Розділ
Ліцензія
Авторське право (c) 2020 Anatoly N. Goltsev, Tatiana G. Dubrava, Yulia A. Gaevskaya, Ekaterina E. Yampolskaya, Lyudmila V. Ostankova, Maksim V. Ostankov
Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Автори, які публікуються у цьому журналі, погоджуються з наступними умовами:
- Автори залишають за собою право на авторство своєї роботи та передають журналу право першої публікації цієї роботи на умовах ліцензії Creative Commons Attribution License, котра дозволяє іншим особам вільно розповсюджувати опубліковану роботу з обов'язковим посиланням на авторів оригінальної роботи та першу публікацію роботи у цьому журналі.
- Автори мають право укладати самостійні додаткові угоди щодо неексклюзивного розповсюдження роботи у тому вигляді, в якому вона була опублікована цим журналом (наприклад, розміщувати роботу в електронному сховищі установи або публікувати у складі монографії), за умови збереження посилання на першу публікацію роботи у цьому журналі.
- Політика журналу дозволяє і заохочує розміщення авторами в мережі Інтернет (наприклад, у сховищах установ або на особистих веб-сайтах) рукопису роботи, як до подання цього рукопису до редакції, так і під час його редакційного опрацювання, оскільки це сприяє виникненню продуктивної наукової дискусії та позитивно позначається на оперативності та динаміці цитування опублікованої роботи (див. The Effect of Open Access).