Амінокислотний профіль середовищ співкультивування доімплантаційних ембріонів людини in vitro на моношарі свіжовиділених або кріоконсервованих клітин кумулюса та гранульози

Автор(и)

  • Marina P. Petrushko Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків, Медичний центр «ДРТ-клініка репродуктивної медицини», м. Харків
  • Vladimir I. Pinyaev Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків, Медичний центр «ДРТ-клініка репродуктивної медицини», м. Харків

DOI:

https://doi.org/10.15407/cryo26.02.124

Ключові слова:

клітини кумулюса та гранульози, кріоконсервування, амінокислота, доімплантаційні ембріони людини

Анотація

При Ñпівкультивуванні з клітинами кумулюÑа та гранульози (КГК) ÑтворюєтьÑÑ Ð¼Ñ–ÐºÑ€Ð¾Ð¾Ñ‚Ð¾Ñ‡ÐµÐ½Ð½Ñ, Ñке може забезпечити нормальний ріÑÑ‚ та розвиток доімплантаційних ембріонів людини in vitro. Ð’Ð¸Ð·Ð½Ð°Ñ‡ÐµÐ½Ð½Ñ ÐºÑ–Ð»ÑŒÐºÑ–Ñного та ÑкіÑного Ñкладу такого Ñередовища має важливе Ð·Ð½Ð°Ñ‡ÐµÐ½Ð½Ñ Ð¿Ñ–Ð´ Ñ‡Ð°Ñ ÑÑ‚Ð²Ð¾Ñ€ÐµÐ½Ð½Ñ ÑиÑтем ÐºÑƒÐ»ÑŒÑ‚Ð¸Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ ÐµÐ¼Ð±Ñ€Ñ–Ð¾Ð½Ñ–Ð² людини in vitro. У роботі викориÑтовували ембріони людини п'Ñтої доби розвитку (ÑÑ‚Ð°Ð´Ñ–Ñ Ð±Ð»Ð°ÑтоциÑти), моношарові культури Ñвіжовиділених та кріоконÑервованих КГК. ДоÑліджували вплив ÐºÑƒÐ»ÑŒÑ‚Ð¸Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ Ð½Ð° моношаровій культурі Ñвіжовиділених та кріоконÑервованих КГК на морфокинетичні характериÑтики доімплантаційних ембріонів людини, отриманих in vitro, та амінокиÑлотний профіль Ñередовищ культивуваннÑ. Ð’Ñтановлено, що кріоконÑÐµÑ€Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ Ð½Ðµ впливає на здатніÑÑ‚ÑŒ КГК підтримувати розвиток доімплантаційних ембріонів та покращує Ñ—Ñ… ÑкіÑÑ‚ÑŒ. Визначено відмінніÑÑ‚ÑŒ амінокиÑлотного Ñкладу Ñтандартного Ñередовища та Ñередовищ ÑÐ¿Ñ–Ð²ÐºÑƒÐ»ÑŒÑ‚Ð¸Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ Ð½Ð° моношарі нативної або кріоконÑервованої культури кумулюÑа та гранульози. ПриÑутніÑÑ‚ÑŒ клітин КГК змінює біохімічний профіль cередовища ÐºÑƒÐ»ÑŒÑ‚Ð¸Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ Ð·Ð° рахунок Ð¿Ñ–Ð´Ð²Ð¸Ñ‰ÐµÐ½Ð½Ñ Ð²Ð¼Ñ–Ñту таких амінокиÑлот, Ñк триптофан, пролін, валін, орнітин та глутамін.

Посилання

Adjaye J., Huntriss J., Herwig R. et al. Primary differentiation in the human blastocyst: comparative molecular portraits of inner cell mass and trophectoderm cells. Stem Cells 2005; 23(10): 1514–1525. CrossRef PubMed

Aktan T.M., Gorkemli H., Gezginc K. et al. Improvement in embryo quality and pregnancy rates by using autologous cumulus body during ICSI cycles. J Turk Ger Gynecol Assoc 2011; 12(3): 162–167. CrossRef PubMed

Brison D.R., Houghton F.D. Identification of viable embryos in IVF by on-invasive measurement of amino acid trunover. Hum Reprod 2004; 19(10): 2319–2324. CrossRef PubMed

Carrell D.T., Peterson C.M., Jones K.P. et al. A simplified coculture system using homologous, attached cumulus tissue results in improved human embryo morphology and pregnancy rates during in vitro fertilization. J Assist Reprod Genet 1999; 16(7): 344–349. CrossRef PubMed

Ellenbogen A., Shalom-Paz E., Anshina M.B. Maturation of oocytes in vitro. Indications, techniques and results. Problemy Reproduktologii 2015; 21(1): 32–40. CrossRef

Fabbri R., Porcu E., Marsella T. et al. Human embryo development and pregnancies in an homologous granulosa cell coculture system. J Assist Reprod Genet 2000; 17(1): 1–12. CrossRef PubMed

Gardner DK, Schoolcraft WB. Culture and transfer of human blastocyst. Curr Opin Obstet Gynecol 1999 Jun; 11(3): 307–11. CrossRef PubMed

Houghton F., Hawkhead J., Humpherson P. et al. Non-invasive amino acid turnover predicts human embryo developmental capacity. Hum Reprod 2002; 18(8): 1756–1757. CrossRef

Huang Z., Wells D. The human oocyte and cumulus cells relationship: new insights from the cumulus cell transcriptome. Mol. Hum. Reprod 2010; 16(10): 715–725. CrossRef PubMed

Hudson N.L., Berg M.C., Green M.P. et al. The microenviron-ment of the ovarian follicle in the postpartum dairy cow: effects on reagent transfer from cumulus cells to oocytes in vitro. Theriogenology 2014; 82(4): 563–573. CrossRef PubMed

Kattal N, Cohen J, Barmat L. Role of coculture in human in vitro fertilization: a meta-analysis. Fertil Steril. 2008; 90(4): 1069–1076. CrossRef PubMed

Khan D., Guillemette C., Sirard M. et al. Transcriptomic analysis of cyclic AMP response in bovine cumulus cells. Physiol Genomics 2015; 47(9): 432–442. CrossRef PubMed

Kuran M., Robinson J., Brown D. et al. Development, amino acid utilization and cell allocation in bovine embryos after in vitro production in contrasting culture systems. Reproduction 2002; 124(3): 155–165. CrossRef PubMed

Latham K., Schultz R. Embryonic genome activation. Front Biosci 2001; (6): 748–759. CrossRef

Leese H.J. The formation and function of oviduct fluid. J Reprod. Fert 1988; 82(4): 843–856. CrossRef PubMed

Li R., Whitworth K., Lai L. et al. Concentration and composition of free amino acids and osmolalities of porcine oviductal and uterine fluid and their effects on development of porcine IVF embryos. Mol Reprod Dev. 2007; 74(9): 1228–1235. CrossRef PubMed

McKiernan S., Clayton M., Bavister B. Analysis of stimulatory and inhibitory amino acids for development of hamster one–cell embryos in vitro. Mol. Reprod. Dev. 1995; 42(2): 188–199. CrossRef PubMed

Nagy Z., Varghese A., Agarwal A. Practical manual of in vitro fertilization: advanced methods and novel devices. Springer Science & Business Media, 2012. CrossRef

Petrushko M.P., Pinayev V.I., Revenko O.B. et al. Morphofunctional characteristics of native and cryopreserved human ovarian granulosa and cumulus cells. Problems of Cryobiology 2014; 25(1): 57–66. CrossRef

Protocol on Embryo Protection A Working Party of the 24th Meeting of the Steering Committee on Bioethics of the Council of Europe; Report, Strasbourg, 2003.

Seli E., Botros L. Noninvasive metabolomic profiling of embryo culture media using proton nuclear magnetic correlates with reproductive potential of embryos in women undergoing in vitrofertilization. Fertil. Steril 2008; 90(6): 2183–2189. CrossRef PubMed

Sturmey R.G., Hawkhead J.A. DNA damage and metabolic activity in the preimplantation embryo. Hum Reprod 2009; 24(1): 81–91. CrossRef PubMed

Zanoni M., Garagna S., Redi С. et al.The 2–cell block occurring during development of outbred mouse embryos is rescued by cytoplasmic factors present in inbred metaphase II oocytes. Int J Dev Biol 2009; 53(1): 129–134. CrossRef PubMed

Downloads

Опубліковано

2016-06-23

Як цитувати

Petrushko, M. P., & Pinyaev, V. I. (2016). Амінокислотний профіль середовищ співкультивування доімплантаційних ембріонів людини in vitro на моношарі свіжовиділених або кріоконсервованих клітин кумулюса та гранульози. Проблеми кріобіології і кріомедицини, 26(2), 124–132. https://doi.org/10.15407/cryo26.02.124

Номер

Розділ

Теоретична та експериментальна кріобіологія