Антиоксидант глутатион повышает устойчивость ядросодержащих клеток кордовой крови во время криоконсервирования с диметилсульфоксидом
DOI:
https://doi.org/10.15407/cryo30.01.058Ключевые слова:
ÐºÐ¾Ñ€Ð´Ð¾Ð²Ð°Ñ ÐºÑ€Ð¾Ð²ÑŒ человека, ÑдроÑодержащие клетки, криоконÑервирование, диметилÑульфокÑид, активные формы киÑлорода, глутатионАннотация
Проведена комплексная оценка эффективности криоконсервирования ядросодержащих (ЯСК), в том числе гемопоэтических прогениторных (ГПК), клеток кордовой крови (КК) в защитных средах, содержащих проникающий криопротектор диметилсульфоксид (ДМСО) и антиоксидант глутатион в различных концентрациях, сразу после размораживания и последующего переноса в условия, моделирующие физиологические in vitro. Применение 1 и 3 мМ глутатиона в криозащитной среде с 7,5 и 10% ДМСО позволяет сохранить 85,9% жизнеспособных ЯСК и 91,2% ГПК сразу после размораживания и 75–80% жизнеспособных ЯСК/ГПК после часовой инкубации в растворе Хенкса, что превышает контрольные значения без добавления антиоксиданта. При этом сохранность и жизнеспособность ЯСК и ГПК после криоконсервирования в растворах с 5% ДМСО и 1 и 3 мМ глутатиона были на уровне (или даже превышали их) полученных с 7,5 и 10% ДМСО без применения антиоксиданта. Установлено, что криоконсервирование ЯСК в растворах, содержащих глутатион, снижает количество DCF+-клеток. Комбинация 7,5% ДМСО и 1 или 3 мМоль глутатиона уменьшает количество клеток с избыточным содержанием активных форм кис-лорода с 19% (в образцах без добавления глутатиона) до 11% (в образцах с глутатионом), даже после переноса в условия, моделирующие физиологические in vitro.
Probl Cryobiol Cryomed 2020; 30(1): 058–067
Библиографические ссылки
Abdulkadyrov KM, Romanenko NA, Selyvanov EA. [Our experience in the preparation, testing and storage of cord blood hematopoietic cells]. Cell Transplantation and Tissue Engineering. 2006; 3(1): 63-5. Russian.
Chen G, Yue A, Ruan Z, et al. Comparison of the effects of different cryoprotectants on stem cells from umbilical cord blood. Stem Cells Int [Internet]. 2016 [cited 2019 March 10]; 2016: 1396783-89. Available from: https://www.hindawi.com/journals/sci/2016/1396783/
Davis JM, editor. Basic cell culture. A practical approach. Oxford: Oxford University Press; 2002. 382 p.
De Ménorval MA, Mir LM, Fernández ML, Reigada R. Effects of dimethyl sulfoxide in cholesterol-containing lipid membranes: а comparative study of experiments in silico and with cells. PLoS One [Internet]. 2012 Jul 25 [cited 2019 March 10];7(7):e41733. Available from: https://journals.plos.org/plosone/article?id=10.1371/journal.pone.0041733 CrossRef
Forman HJ. Glutathione - from antioxidant to post-translational modifier. Arch Biochem Biophys. 2016;595:64-7. CrossRef
Gardner SG, Raina JB, Ralph PJ, Petrou K. Reactive oxygen species (ROS) and dimethylated sulphur compounds in coral explants under acute thermal stress. J Exp Biol. 2017;220(Pt 10):1787-91. CrossRef
Kadekar D, Rangole S, Kale V, Limaye L. Conditioned medium from placental mesenchymal stem cells reduces oxidative stress during the cryopreservation of Ex Vivo expanded umbilical cord blood cells. PLoS One [Internet]. 2016 Oct 25 [cited 2019 March 10];11(10):e0165466. Available from: https://journals.plos.org/plosone/article?id=10.1371/journal.pone.0165466. CrossRef
Mantri S, Kanungo S, Mohapatra PC. Cryoprotective effect of disaccharides on cord blood stem cells with minimal use of DMSO. Indian J Hematol Blood Transfus. 2015;31(2):206-12. CrossRef
Roura S, Pujal J-M, Gálvez-Montón C, Bayes-Genis A. The role and potential of umbilical cord blood in an era of new therapies: a review. Stem Cell Res Ther. 2015; 6(1): 123-8. CrossRef
Scott KL, Lecal J, Acker JP. Biopreservation of red blood cells: past, present and future. Transfus Med Rev. 2005;19(2):127-42. CrossRef
Setyawan EMN, Kim MJ, Oh HJ, et al. Spermine reduces reactive oxygen species levels and decreases cryocapacitation in canine sperm cryopreservation. Biochem Biophys Res Commun. 2016;479(4):927-32. CrossRef
Sutherland DR, Anderson L, Keeney M, et al. The ISHAGE guidelines for CD34+ cell determination by flow cytometry. International Society of Hematotherapy and Graft Engineering. J Hematother. 1996;5(3):213-26. CrossRef
Vakifahmetoglu-Norberg H, Ouchida AT, Norberg E. The role of mitochondria in metabolism and cell death. Biochem Biophys Res Commun. 2017;482(3):426-31. CrossRef
Wardman P. Fluorescent and luminescent probes for measurement of oxidative and nitrosative species in cells and tissues: progress, pitfalls, and prospects. Free Radic Biol Med. 2007;43(7):995-1022. CrossRef
Zembruski NC, Stache V, Haefeli WE, Weiss J. 7-Aminoactinomycin D for apoptosis staining in flow cytometry. Anal Biochem. 2012;429(1):79-81. CrossRef
Zimmermann M, Meyer N. Annexin V/7-AAD staining in keratinocytes. Methods Mol Biol. 2011;740:57-63. CrossRef
Загрузки
Опубликован
Как цитировать
Выпуск
Раздел
Лицензия
Copyright (c) 2020 Olena Makashova, Olga Mykhailova, Oksana Zubova, Pavlo Zubov, Lubov Babijchuk
Это произведение доступно по лицензии Creative Commons «Attribution» («Атрибуция») 4.0 Всемирная.
Авторы, публикующие в данном журнале, соглашаются со следующим:
- Авторы сохраняют за собой авторские права на работу и предоставляют журналу право первой публикации работы на условиях лицензии Creative Commons Attribution License, которая позволяет другим распространять данную работу с обязательным сохранением ссылок на авторов оригинальной работы и оригинальную публикацию в этом журнале.
- Авторы сохраняют право заключать отдельные контрактные договоренности, касающиеся не-эксклюзивного распространения версии работы в опубликованном здесь виде (например, размещение ее в институтском хранилище, публикацию в книге), со ссылкой на ее оригинальную публикацию в этом журнале.
- Авторы имеют право размещать их работу в сети Интернет (например в институтском хранилище или персональном сайте) до и во время процесса рассмотрения ее данным журналом, так как это может привести к продуктивному обсуждению и большему количеству ссылок на данную работу (См. The Effect of Open Access).
