Кріоконсервування еритроцитів коня і бика із застосуванням комбінованих захисних середовищ

Автор(и)

  • Pavlo Yu. Ulizko Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків
  • Olena M Bobrova Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків
  • Oleg A Nardid 1. Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків 2. Харківський національний університет ім. Ð’.Н.Каразіна, м. Харків
  • Pavlo Ðœ. Zubov Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків
  • Igor F. Kovalenko Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків
  • Vadim M. Kuchkov Харківський національний університет ім. Ð’.Н.Каразіна, м. Харків
  • Larisa A. Vodopyanova Харківська державна зооветеринарна Академія, м. Харків

DOI:

https://doi.org/10.15407/cryo29.03.255

Ключові слова:

кріоконсервування, еритроцити коня і бика, комбіновані кріоконсервуючі середовища, гемоліз, флуоресцентний барвник

Анотація

У роботі проведено порівнÑльний аналіз ефективноÑÑ‚Ñ– кріоконÑÐµÑ€Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ ÐµÑ€Ð¸Ñ‚Ñ€Ð¾Ñ†Ð¸Ñ‚Ñ–Ð² ÐºÐ¾Ð½Ñ Ñ– бика з заÑтоÑуваннÑм однокомпонентного (20% ДМСО) Ñ– комбінованого (10% ДМСО, 20% ПЕО-1500) захиÑних Ñередовищ. Методами флуореÑцентної мікроÑкопії та проточної цитофлуориметрії вÑтановлено, що флуореÑцентний барвник 3-DAB забарвлює мембрани еритроцитів Ñ– може заÑтоÑовуватиÑÑ Ð´Ð»Ñ Ð¾Ñ†Ñ–Ð½ÐºÐ¸ Ñ—Ñ… Ñтану на вÑÑ–Ñ… етапах кріоконÑервуваннÑ. ВиÑвлено, що викориÑÑ‚Ð°Ð½Ð½Ñ ÐºÐ¾Ð¼Ð±Ñ–Ð½Ð¾Ð²Ð°Ð½Ð¸Ñ… захиÑних Ñередовищ дозволÑÑ” значно покращити результати кріоконÑÐµÑ€Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ ÐµÑ€Ð¸Ñ‚Ñ€Ð¾Ñ†Ð¸Ñ‚Ñ–Ð² ÐºÐ¾Ð½Ñ Ñ– бика у порівнÑнні з однокомпонентними Ñередовищами. За цитофлуориметричними даними вÑтановлено, що показники еритроцитів ÐºÐ¾Ð½Ñ Ð¿Ñ–ÑÐ»Ñ ÐºÐ¾Ð½ÑÐµÑ€Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ Ñƒ Ñередовищі на оÑнові ДМСО не відповідали контрольним, навіть піÑÐ»Ñ Ð²Ñ–Ð´Ð¼Ð¸Ð²Ð°Ð½Ð½Ñ Ð²Ñ–Ð´ кріопротектора, а піÑÐ»Ñ Ð·Ð°Ð¼Ð¾Ñ€Ð¾Ð¶ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ Ñƒ комбінованому захиÑному Ñередовищі Ñ– Ð²Ñ–Ð´Ð¼Ð¸Ð²Ð°Ð½Ð½Ñ Ð²Ñ–Ð´ кріопротекторів вони відповідали контрольним. ПоÑÐ¸Ð»ÐµÐ½Ð½Ñ Ñ„Ð»ÑƒÐ¾Ñ€ÐµÑценції еритроцитів ÐºÐ¾Ð½Ñ Ñ– бика на флуореÑцентних зображеннÑÑ… та зміни Ñ—Ñ… Ñтану на цитограмах піÑÐ»Ñ Ð·Ð¼Ñ–ÑˆÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ Ð· 20%-м розчином ДМСО Ñвідчать про його потужну мембранотропну дію. Рівень гемолізу еритроцитів ÐºÐ¾Ð½Ñ Ñ– бика піÑÐ»Ñ Ð·Ð°ÑтоÑÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ ÐºÐ¾Ð¼Ð±Ñ–Ð½Ð¾Ð²Ð°Ð½Ð¾Ð³Ð¾ кріозахиÑного Ñередовища на вÑÑ–Ñ… етапах кріоконÑÐµÑ€Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ Ð·Ð½Ð°Ñ‡ÑƒÑ‰Ðµ нижчий, ніж 20%-го розчину ДМСО.

 

Біографії авторів

Pavlo Yu. Ulizko, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріобіофізики

Olena M Bobrova, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріобіофізики

Oleg A Nardid, 1. Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків 2. Харківський національний університет ім. В.Н.Каразіна, м. Харків

Відділ кріобіофізики

Pavlo М. Zubov, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ криоцитології

Igor F. Kovalenko, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ низькотемпературного конÑервуваннÑ

Посилання

Anchordoguy TJ, Carpenter JF, Crowe JH, et al. Temperature dependent perturbation of phospholipids-bilayers by dimethylsulfoxide. Biochim Biophys Acta. 1992; 1104(1): 117-22. CrossRef

Baskurt OK, Farley RA, Meiselman HJ. Erythrocyte aggregation tendency and cellular properties in horse, human, and rat: a comparative study. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 1997; 273(6):H2604-H2612. [Cited 01.07.2019] Available from: https://www.physiology.org/journal/ajpheart CrossRef

Best BP. Cryoprotectant Toxicity: Facts, Issues, and Questions. Rejuvenation Research. 2015; 18(5):422-36. [Cited 01.07.2019] Available from: https://www.liebertpub.com/loi/rej CrossRef

Buriak IA, Zinchenko VD, Dyubko TS, et al. Application of new fluorescent dyes in cryobiological studies. Problems of Cryobiology. 2008; 18(1): 17-21.

Denisova ON, Kuleshova LG, Zemlyanskikh NG, et al. Postthaw morphological changes in animal erythrocytes. Problems of Cryobiology. 2007; 17(2): 150-5.

Denisova ON, Zhegunov GF, Babijchuk LA. Cryopreservation of animal's erythrocytes under dimethyl sulfoxide, polyethylene oxide and glycerol protection. Problems of Cryobiology. 2005; 15(2): 195-201.

Еgorov MI, Dyubko TS, Linnik TP, et al. New fluorescent dyes as fluorescent probes for examination of canine spermatozoa in cryoprotective media. Problems of Cryobiology. 2006. 16(1): 13-23.

Elliott GD, Wang S, Fuller BJ. Cryoprotectants: A review of the actions and applications of cryoprotective solutes that modulate cell recovery from ultra-low temperatures. Cryobiology. 2017; 76:74-91. CrossRef

Holowaychuk MK, Yagi K. Evolution of veterinary transfusion medicine and blood banking. Manual of Veterinary Transfusion Medicine and Blood Banking. 2016 1:1-12. CrossRef

Keeble E, Meredith A, Richardson J, editors. Rabbit medicine and surgery. Veterinary Self-Assessment Color Review Series. Boca Raton: CRC Press, 2016. 243 p. CrossRef

Mair T, Divers T. Equine Internal Medicine. Veterinary selfassessment color review series. Boca Raton: CRC Press; 2015. 399 p. CrossRef

Pogozhykh D, Pakhomova Y, Pervushina O, et al. Exploring the possibility of cryopreservation of feline and canine erythrocytes by rapid freezing with penetrating and non-penetrating cryoprotectants. Stieger K, editor. PLOS ONE. 2017; 12(1): e0169689. [Cited 08.08.2019] Available from: https://journals.plos.org/plosone/article?id=10.1371/journal.pone.0169689 CrossRef

Sink C. Practical Transfusion medicine for the small animal practitioner. Jackson: Teton NewMedia, 2004. 110 p.

Ulizko PU, Bobrova OM, Nardid EO, et al. Cryopreservation of animals′ erythrocytes. In: European Research Area: Status, Problems and Prospects. Proceedings of the International Academic Congress; Sept 01–02 2016, Riga, Latvia. Riga; 2016. p. 13–5.

Ulizko PY, Zhegunov GF, Bobrova OM, Zinchenko AV. Influence of mixtures of cryoprotective on safety of cryopreservation of erythrocyte of mammals. Bulletin of problems in biology and medicine. 2011; 3(3): 26-9. Russian.

Won DI, Suh JS. Flow cytometric detection of erythrocyte osmotic fragility. Cytometry Part B: Clin Cytom. 2009;76(2):135-41. CrossRef

Yagi K, Holowaychuk M. Manual of veterinary transfusion medicine and blood banking. Ames: Wiley-Blackwell, 2016. 382 p. CrossRef

Yamamoto A, Saito N, Yamauchi Y, et al. Flow cytometric analysis of red blood cell osmotic fragility. Journal of Laboratory Automation. 2014; 19(5):483-7. [Cited 01.07.2019] Available from: https://journals.sagepub.com/home/jla CrossRef

Zemlianskykh NG, Kovalenko IF, Babijchuk LA. Peculiarities of modifications in geometric parameters and changes in osmotic fragility of human erythrocytes following their exposure in sucrose and PEG-1500 Solutions. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2017; 27(4): 296-310. CrossRef

Zubov PM. Altered lipid asymmetry of membranes of red blood cells of cord and donor blood under Cryopreservation with PEG-1500. Bulletin of problems in biology and medicine. 2013; 2(2): 109-112. Russian.

Downloads

Опубліковано

2019-09-19

Як цитувати

Ulizko, P. Y., Bobrova, O. M., Nardid, O. A., Zubov, P. Ðœ., Kovalenko, I. F., Kuchkov, V. M., & Vodopyanova, L. A. (2019). Кріоконсервування еритроцитів коня Ñ– бика із застосуванням комбінованих захисних середовищ. Проблеми кріобіології і кріомедицини, 29(3), 255–265. https://doi.org/10.15407/cryo29.03.255

Номер

Розділ

Кріоконсервування біологічних систем