Динаміка проникання диметилсульфоксиду в клітини лінії L929 і сфероїди з них

Автор(и)

  • Anton Moisieiev Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків https://orcid.org/0000-0003-4585-1194
  • Igor Kovalenko Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків https://orcid.org/0000-0002-7063-6712
  • Svitlana Kovalenko Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків
  • Galyna Bozhok Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків https://orcid.org/0000-0002-4188-9286
  • Olga Gordienko Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків https://orcid.org/0000-0002-4459-4213

DOI:

https://doi.org/10.15407/cryo31.04.316

Ключові слова:

клітини лінії L929, сфероїди, коефіцієнти фільтрації, коефіцієнти проникності, диметилсульфоксид, осмотично неактивний об’єм, кріоконсервування

Анотація

У роботі запропоновано алгоритм розрахунку ефективних коефіцієнтів проникності для багатоклітинних об’єктів у кріозахисному середовищі на підставі фізико-математичної моделі процесів масопереносу. У проведених дослідженнях отримано значення поверхнево-об’ємного відношення для клітин лінії L929 за різних температур і розраховано коефіцієнт теплового розширення площі поверхні мембран клітин β = 2,7 × 10–3 /°C. Визначено величини осмотично неактивного об’єму для клітин лінії L929 і сфероїдів з них. З динамічних кривих зміни відносного об’єму знайдено коефіцієнти фільтрації та проникності для ДМСО клітин лінії L929 та сфероїдів in toto. Розраховані показники є найбільшими для поодиноких клітин і значуще (р < 0,05) зменшуються для клітин у складі сфероїдів зі збільшенням глибини їх розташування, що може бути наслідком зменшення доступної поверхні клітин у складі сфероїдів для проникання позаклітинних речовин. Отримані в роботі характеристики проникності сфероїдів можуть бути використані для розроблення оптимальних режимів кріоконсервування цих об’єктів.

 

Probl Cryobiol Cryomed 2021; 31(4): 316–325

Біографії авторів

Anton Moisieiev , Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріоендокринології

Igor Kovalenko, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ низькотемпературного консервування

Svitlana Kovalenko, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ низькотемпературного консервування

Galyna Bozhok , Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріоендокринології

Olga Gordienko , Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ низькотемпературного консервування

Посилання

Abu-Absi SF, Friend JR, Hansen LK, HuW-S. Structural polarity and functional bile canaliculi in rat hepatocyte spheroids. Exp Cell Res. 2002; 274: 56-67. CrossRef

Achilli T-M, Meyer J, Morgan JR. Advances in the formation, use and understanding of multi-cellular spheroids. Expert Opin Biol Ther. 2012; 12(10): 1347-60. CrossRef

Akiyama M, Nonomura H, Kamil SH, Ignotz RA. Periosteal cell pellet culture system:a new technique for bone engineering. Cell Transplant. 2006; 15: 521-32. CrossRef

Arai K, Murata D, Takao S, et al. Cryopreservation method for spheroids and fabrication of scaffold-free tubular constructs. PLoS ONE [Internet]. 2020 Apr 02 [cited 2021 May 15]; 15(4):e0230428. Available from: https://journals.plos.org/plosone/article?id=10.1371/journal.pone.0230428 CrossRef

Frese KK; Tuveson DA. Maximizing mouse cancer models. Nat Rev Cancer. 2007; 7: 645-58. CrossRef

Gordiyenko ОІ. [Estimation of the thermal expansion coefficient of erythrocyte membrane surface by shift of erythrocyte distribution curve by spherical index]. Biophysical Bulletin. 2003; 13 (2): 78-81. Ukranian.

Gordiyenko YeО, Gordiyenko ОІ, Maruschenko VV, Sakun OV. [Improved model for the passive mass transfer through the cell plasma membrane]. Biophysical Bulletin. 2008; 21(2): 75-80. Ukranian.

Gordiyenko YeO, Pushkar NS. [Physical basis for low temperature preservation of cell suspensions]. Кyiv: Naukova dumka; 1994. 140 p. Russian.

Griffith LG, Swartz MA. Capturing complex 3D tissue physiology in vitro. Nat Rev Mol Cell Biol. 2006; 7: 211-24. CrossRef

Holtfreter J. A study of the mechanisms of gastrulation. J Exp Zool. 1944; 95: 171-212. CrossRef

Kelm JM, Timmins NE, Brown CJ, et al. Method for generation of homogeneous multicellular tumor spheroids applicable to a wide variety of cell types. Biotechnol Bioeng. 2003; 83: 173-80. CrossRef

Kosheleva NV, Efremov YM, Shavkuta BS. Cell spheroid fusion: beyond liquid drops model. Sci Rep [Internet]. 2020 Jul 28 [cited 2021 May 15]; 10:12614. Available from: https://www.nature.com/articles/s41598-020-69540-8 CrossRef

Kunz-Schughart LA, Schroeder JA, Wondrak M, et al. Potential of fibroblasts to regulate the formation of three-dimensional vessel-like structures from endothelial cells in vitro. Am J Physiol Cell Physiol. 2006; 2905: 1385-98. CrossRef

Langhans SA. Three-dimensional in vitro cell culture models in drug discovery and drug repositioning. Front Pharmacol [Internet]. 2018 Jan 23 [cited 2021 May 15]; 9:6. Available from: https://www.frontiersin.org/articles/10.3389/fphar.2018.00006/full CrossRef

Lee JH, Jung DH, Lee DH, et al. Effect of spheroid aggregation on susceptibility of primary pig hepatocytes to cryopreservation. Transplant Proc. 2012; 44: 1015-7. CrossRef

Lin R-Z, Chang H-Y. Recent advances in three-dimensional multicellular spheroid culture for biomedical research. Biotechnology J. 2008; 3: 1172-84. CrossRef

Matta SG, Wobken JD, Williams FG, Bauer GE. Pancreatic islet cell reaggregation systems: Efficiency of cell reassociation and endocrine cell topography of rat islet-like aggregates. Pancreas 1994; 9: 439-49. CrossRef

Moscona A, Moscona H. The dissociation and aggregation of cells from organ rudiments of the early chick embryo. J Anat. 1952; 86: 287-301. PubMed

Nyberg SL, Hardin J, Amiot B, et al. Rapid large-scale formation of porcine hepatocyte spheroids in a novel spheroid reservoir bioartificial liver. Liver Transpl. 2005; 11: 901-10. CrossRef

Ogurtsova VV, Kovalenko SYe, Kovalenko IF, Gordiyenko OI. Determination of osmotically inactive volume of murine enterocytes. Probl Cryobiol Cryomed. 2016; 26(1): 93-7. CrossRef

Pampaloni F, Reynaud EG, Stelzer EH. The third dimension bridges the gap between cell culture and live tissue. Nat Rev Mol Cell Biol. 2007; 8: 839-45. CrossRef

Pinto B, Henriques AC, Silva PM, Bousbaa H. Three-dimensional spheroids as in vitro preclinical models for cancer research. Pharmaceutics [Internet]. 2020 Dec 6 [cited 2021 May 15]; 12(12):1186. Available from: https://microbialcellfactories.biomedcentral.com/articles/10.1186/s12934-015-383-5 CrossRef

Ryu N-E, Lee S-H, Park H. Spheroid culture system methods and applications for mesenchymal stem cells. Cells [Internet]. 2019 Dec 12 [cited 2021 May 15]; 8:1620. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC6953111/ CrossRef

Suenaga H, Furukawa KS, Suzuki Y, et al. Bone regeneration in calvarial defects in a rat model by implantation of human bone marrow-derived mesenchymal stromal cell spheroids. J Mater Sci Mater Med [Internet]. 2015 Oct 08 [cited 2021 May 15]; 26:254. Available from: https://link.springer.com/article/10.1007%2Fs10856-015-5591-3 CrossRef

Yamaguchi Y, Ohno J, Sato A, et al. Mesenchymal stem cell spheroids exhibit enhanced in-vitro and in-vivo osteoregenerative potential. BMC Biotechnol [Internet]. 2014 Dec 06 [cited 2021 May 15]; 14:105. Available from: https://bmcbiotechnol.biomedcentral.com/articles/10.1186/s12896-014-0105-9 CrossRef

Downloads

Опубліковано

2021-12-24

Як цитувати

Moisieiev , A., Kovalenko, I., Kovalenko, S., Bozhok , G., & Gordienko , O. (2021). Динаміка проникання диметилсульфоксиду в клітини лінії L929 і сфероїди з них. Проблеми кріобіології і кріомедицини, 31(4), 316–325. https://doi.org/10.15407/cryo31.04.316

Номер

Розділ

Теоретична та експериментальна кріобіологія