Оптимізація режиму відтавання кріоконсервованої сперми людини при нормо- та патоспермії

Автор(и)

  • Olena Pavlovych Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків
  • Olena Revenko Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків
  • Ganna Gapon Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків

DOI:

https://doi.org/10.15407/cryo26.01.045

Ключові слова:

спермії людини, кріоконсервування, відтавання, рухливість, деконденсація, хроматин

Анотація

ВнаÑлідок поширеного розвитку допоміжних репродуктивних технологій актуальним Ñ” вдоÑÐºÐ¾Ð½Ð°Ð»ÐµÐ½Ð½Ñ ÑпоÑобів кріоконÑÐµÑ€Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ Ñперміїв. У роботі доÑліджено показники морфофункціонального Ñтану кріоконÑервованих Ñперміїв людини в нормі та при патології за різних ÑпоÑобів відтаваннÑ. УÑÑ– зразки витримували над дзеркалом рідкого азоту, подальший нагрів Ñперміїв здійÑнювали на водÑній бані (37, 50, 60, 70°С) та витримували за кімнатної температури до поÑви рідкої фази. Морфофункціональний Ñтан Ñперміїв оцінювали за їхньою рухливіÑÑ‚ÑŽ та життєздатніÑÑ‚ÑŽ, а Ñтан хроматину – за допомогою акридину оранжевого. Ð’Ñтановлено, що режим Ð²Ñ–Ð´Ñ‚Ð°Ð²Ð°Ð½Ð½Ñ Ð¿Ñ€Ð¸ 50°С (із попередньою інкубацією зразків у парах рідкого азоту (–150°С)) піÑÐ»Ñ ÐºÑ€Ñ–Ð¾ÐºÐ¾Ð½ÑÐµÑ€Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ Ñперміїв за 3-етапною програмою ефективно зберігає Ñ—Ñ… рухливіÑÑ‚ÑŒ без змін ціліÑноÑÑ‚Ñ– мембрани та Ñтану нуклеарного хроматину в нормі та при аÑтенозооÑпермії. Ð’Ñ–Ð´Ñ‚Ð°Ð²Ð°Ð½Ð½Ñ Ð·Ñ€Ð°Ð·ÐºÑ–Ð² при кімнатній температурі за тих же умов Ñ” найбільш травматичним Ð´Ð»Ñ Ñперміїв у випадку Ñк нормо-, так Ñ– аÑтенозооÑпермії.

Біографії авторів

Olena Pavlovych, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріобіології ÑиÑтеми репродукції

Olena Revenko, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріобіології ÑиÑтеми репродукції

Ganna Gapon, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріобіології ÑиÑтеми репродукції

Посилання

Ahmad K. Effect of thaw rates on survival of buffalo spermatozoa frozen straws. J Dairy Sci 1984; 67(7): 1535–1538. CrossRef

Ansari M.S., Rakha B.A., Andrabi S.M. et al. Effect of straw size and thawing time on quality of cryopreserved buffalo (Bubalus bubalis) semen. Reprod Biol 2011; 11(1): 49–54. CrossRef

Barth A.D., Bowman P.A. Determination of the best practical method of thawing bovine semen. Can Vet J 1988; 29(4): 366–369.

Bragina E.E., Abdumalikova R.Ð. Guide of spermatology. Moscow: SOREK-poligrafia 2002.

Dhami A.J., Sahni K.L., Mohan G. Effect of various cooling rates (from 30 degrees C to 5 degrees C) and thawing temperatures on the deep-freezing of Bos Taurus and Bos Bubalis semen. Theriogenology 1992; 38(3): 565–574. CrossRef

Dhami A.J., Sahni K.L., Mohan G. et al. Effects of different variables on the freezability, post-thaw longevity and fertility of buffalo spermatozoa in the tropics. Theriogenology 1996; 46(1): 109–120. CrossRef

Dong Q., Hill D., VandeVoort C.A. Interactions among pre–cooling, cryoprotectant, cooling, and thawing for sperm cryopreservation in rhesus monkeys. Cryobiology 2009; 59(3): 268–274. CrossRef PubMed

Dunaevskaya A.V., Kramar M.I. Changing the status of the nuclear chromatin of human sperm in the process of cryopreservation. Medicine Today and Tomorrow 2000; 3: 13–15.

Evenson D., Jost L. Sperm chromatin structure assay is useful for fertility assessment. Methods Cell Sci 2000; 22(2–3): 169–189.

Gurina T.M., Pakhomov A.V., Kyryliuk A.L. et al. Development of a cryopreservation protocol for testicular interstitial cells with the account of temperature intervals for controlled cooling below –60°С. Cryobiology 2011; 62(2): 107–114. CrossRef PubMed

Gurina T.M., Pakhomov A.V., Polyakova A.L. et al. The development of the cell cryopreservation protocol with controlled rate thawing. Cell Tissue Bank 2015; Sept 18: 1–14 [Epub ahead of print].

Leibo S.P., Farrant J., Mazur P. et al. Effects of freezing on marrow stem cell suspensions: interactions of cooling and warming rates in the presence of PVP, sucrose, or glycerol. Cryobiology 1970; 6(4): 315–332. CrossRef

Narasimha Rao A.V., Haranath G.B., Soma Sekharam G. et al. Effect of thaw rates on motility, survival and acrosomal integrity of buffalo spermatozoa frozen in medium. French straws Anim Reprod Sci 1986; 12(2): 123–129. CrossRef

Pavlovich E.V. Analysis of fullerene's action on human sperm before and after Ñryopreservation. Bulletin of Problems of Biology and Medicine 2014; 3(112): 178–182.

Robbins R.K., Saacke R.G., Chandler P.T. Influence of freeze rate, thaw rate and glycerol level on acrosomal retention and survival of bovine spermatozoa frozen in French straws. J Anim Sci 1976; 42(1): 145–154. CrossRef PubMed

Seki S., Mazur P. The dominance of warming rate over cooling rate in the survival of mouse oocytes subjected to a vitrification procedure. Cryobiology 2009; 59(1): 75–82. CrossRef PubMed

Senger P.L. Handling frozen bovine semen – factors which influence viability and fertility. Theriogenology 1980; 13(1): 51–62. CrossRef

Volkova N.A., Pavlovich E.V., Gapon A.A. et al. Decondensation of chromatin state in human sperm cells after cryopreservation and electromagnetic irradiation of millimeter range. Biophysical Bulletin 2013; 30(2): 87–94.

Volkova N.A., Pavlovich E.V., Gapon A.A., Nikolov O.T. Effects of millimeter–wave electromagnetic exposure on the morphology and function of human cryopreserved spermatozoa. Bulletin of Experimental Biology and Medicine 2014; 157(5): 574–576. CrossRef PubMed

Vorobieva O.A., Voskresenskaya A.V., Odintsov A.A. at al. Male infertility and impaired structural organization of spermatozoa chromatin. Is there any connection? Problems of Reproduction 2005; 6: 56–62.

WHO laboratory manual for the Examination and processing of human semen fifth edition. World Health Organization, Department of Reproductive Health and Research, 2010.

World Health Organization Laboratory manual examination of human semen and semen-cervical mucus interaction. Cambridge: The Press Syndicate of the University of Cambridge, 1997.

Downloads

Опубліковано

2016-03-21

Як цитувати

Pavlovych, O., Revenko, O., & Gapon, G. (2016). Оптимізація режиму відтавання кріоконсервованої сперми людини при нормо- та патоспермії. Проблеми кріобіології і кріомедицини, 26(1), 45–52. https://doi.org/10.15407/cryo26.01.045

Номер

Розділ

Теоретична та експериментальна кріобіологія